Malát dehydrogenáza - Malate dehydrogenase
Malát dehydrogenáza | |||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
![]() Struktura proteinu s připojenými kofaktory | |||||||||
Identifikátory | |||||||||
EC číslo | 1.1.1.37 | ||||||||
Číslo CAS | 9001-64-3 | ||||||||
Databáze | |||||||||
IntEnz | IntEnz pohled | ||||||||
BRENDA | Vstup BRENDA | ||||||||
EXPASY | Pohled NiceZyme | ||||||||
KEGG | Vstup KEGG | ||||||||
MetaCyc | metabolická cesta | ||||||||
PRIAM | profil | ||||||||
PDB struktur | RCSB PDB PDBe PDBsum | ||||||||
|
Malát dehydrogenáza (ES 1.1.1.37 ) (MDH) je enzym že reverzibilně katalyzuje the oxidace z malát na oxaloacetát pomocí redukce NAD+ do NADH. Tato reakce je součástí mnoha metabolické cesty, včetně cyklus kyseliny citronové. Ostatní malát dehydrogenázy, které mají jiná čísla EC a katalyzují další reakce oxidující malát, mají kvalifikovaná jména jako malát dehydrogenáza (NADP+).
Isozymes
Několik isozymy malátdehydrogenázy. Existují dva hlavní izoformy v eukaryotických buňkách.[1] Jeden se nachází v mitochondriální matrici a účastní se jako klíčový enzym v cyklu kyseliny citronové, který katalyzuje oxidaci malátu. Druhý se nachází v cytoplazma, pomáhat malát-aspartátový člun s výměnou redukčních ekvivalentů tak, aby malát mohl procházet mitochondriální membránou a transformovat se na oxaloacetát pro další buněčné procesy.[2]
Lidé a většina ostatních savců exprimují následující dvě malátdehydrogenázy:
|
|
Proteinové rodiny
|
|

Rodina malátdehydrogenázy obsahuje L-laktátdehydrogenázu a L-2-hydroxyisocaproate dehydrogenázy. L-laktátdehydrogenázy katalyzují přeměnu L-laktát na pyruvát, poslední krok v anaerobní glykolýze. The N-konec je vazba Rossmann NAD vázání a C-konec je neobvyklý záhyb alfa + beta.[3][4]
Evoluce a struktura
Ve většině organismů existuje malátdehydrogenáza (MDH) jako a homodimerní molekula a úzce souvisí s laktátdehydrogenáza (LDH) ve struktuře. Je to velká proteinová molekula s podjednotkami o hmotnosti mezi 30 a 35 kDa.[5] Na základě aminokyselinových sekvencí se zdá, že MDH se rozcházel do dvou hlavních fylogenetických skupin, které se velmi podobají buď mitochondriálním izozymům nebo cytoplazmatickým / chloroplastovým izozymům.[6] Protože sekvenční identita malátdehydrogenázy v mitochondriích více souvisí s jeho prokaryotickými předky ve srovnání s cytoplazmatickým izozymem, teorie, že mitochondrie a chloroplasty byly vyvinuty prostřednictvím endosymbióza je věrohodné.[7] Aminokyselinové sekvence archaeal MDH jsou více podobné LDH než MDH jiných organismů. To naznačuje, že existuje možná evoluční vazba mezi laktátdehydrogenázou a malátdehydrogenázou.[8]
Každá podjednotka dimeru malátdehydrogenázy má dvě odlišné domény, které se liší strukturou a funkčností. Paralela β-list struktura tvoří vazebnou doménu NAD +, zatímco čtyři β-listy a jeden α-šroubovice tvoří centrální NAD+ vazebné místo. Podjednotky jsou drženy pohromadě prostřednictvím rozsáhlých vodíkové vazby a hydrofobní interakce.[9]
Bylo také prokázáno, že malát dehydrogenáza má oblast mobilní smyčky, která hraje zásadní roli v katalytické aktivitě enzymu. Studie ukázaly, že konformační změna této smyčkové oblasti z otevřené konformace na uzavřenou konformaci po navázání substrátu zvyšuje katalýzu MDH prostřednictvím stínění substrátu a katalytických aminokyselin před rozpouštědlem. Studie také ukázaly, že tato oblast smyčky je vysoce zachována v malátdehydrogenáze.[6]
Mechanismus

Aktivní místo malátdehydrogenázy je hydrofobní dutina v proteinovém komplexu, která má specifická vazebná místa pro substrát a jeho koenzym, NAD+. Ve svém aktivním stavu prochází MDH konformační změnou, která obklopuje substrát, aby se minimalizovala expozice rozpouštědlu a aby se klíčové zbytky umístily do těsnější blízkosti substrátu.[6] Zejména tři zbytky, které obsahují katalytickou triádu histidin (His-195), aspartát (Asp-168), které oba společně fungují jako systém přenosu protonů, a argininy (Arg-102, Arg-109, Arg-171), které zajišťují podklad.[10]
Mechanicky malátdehydrogenáza katalyzuje oxidaci hydroxylové skupiny malátu pomocí NAD+ jako akceptor elektronů. Tento oxidační krok vede k eliminaci protonu a hydridového iontu ze substrátu. NAD+ přijímá hydridový ion (konkrétně je hydridový ion přenesen na nikotinamidový kruh NAD+) a stává se redukovaným na NADH, zatímco současně zbytek His-195 na enzymu přijímá proton.[11] Pozitivně nabitý zbytek His-195, kterého se účastní základní katalýza substrátu je stabilizován sousedním záporně nabitým zbytkem Asp-168. Tato elektrostatická stabilizace pomáhá usnadnit přenos protonu.[1] Arg-102, Arg-109 a Arg-171 (které jsou protonované, a tedy kladně nabité) se účastní elektrostatická katalýza a pomáhají vázat záporně nabité karboxyláty na substrát. Navíc argininové zbytky na enzymu poskytují další substrátovou specificitu a vazbu prostřednictvím vodíkové vazby mezi guanidiniovým postranním řetězcem aminokyselinových zbytků argininu a karboxyláty substrátu.[12]
Studie také identifikovaly mobilní smyčku v malátdehydrogenáze, která se podílí na katalytické aktivitě enzymu. Smyčka podléhá konformační změně, aby chránila substrát a katalytické aminokyseliny před rozpouštědlem v reakci na vazbu komplexu malát dehydrogenáza: koenzym na substrát. Toto převrácení smyčky do horní polohy k pokrytí aktivního místa také podporuje zvýšenou interakci katalyticky důležitých amino zbytků na enzymu se substrátem. Navíc bylo prokázáno, že pohyb smyčky koreluje s krokem určujícím rychlost enzymu.[13]
Funkce
Reakce

Malát dehydrogenázy katalyzuje interkonverzi malátu na oxaloacetát. V cyklu kyseliny citronové je malátdehydrogenáza zodpovědná za katalyzování regenerace oxaloacetátu. K této reakci dochází oxidací hydroxylové skupiny na malátu a redukcí NAD+. Mechanismus přenosu hydridového iontu na NAD+ se provádí podobným mechanismem jako u laktátdehydrogenázy a alkohol dehydrogenázy. ΔG '° malátdehydrogenázy je +29,7 kJ / mol a ΔG (v buňce) je 0 kJ / mol.[11]
Jiné cesty
Malát dehydrogenáza se také podílí na glukoneogeneze, syntéza glukózy z menších molekul. Na pyruvát v mitochondriích působí pyruvátkarboxyláza za vzniku oxaloacetátu, cyklus kyseliny citronové středně pokročilí. Aby se oxaloacetát dostal z mitochondrií, malát dehydrogenáza jej redukuje na malát a ten pak prochází vnitřní mitochondriální membránou. Poté, co je v cytosolu, je malát oxidován zpět na oxaloacetát pomocí cytosol-malátdehydrogenázy. Konečně, fosfoenolpyruvátkarboxykináza (PEPCK) převádí oxaloacetát na fosfoenolpyruvát (ŘÍZ).[14]
Kinetika
Kinetické studie ukazují, že je uspořádána enzymatická aktivita malátdehydrogenázy. Kofaktor NAD+/ NADH se váže na enzym před substrátem.[15] Hodnota Km pro malát, tj. Koncentrace, při které je aktivita enzymu poloviční, je 2 mM. Hodnota Kcat je 259,2 s−1.[16]
Vliv pH na katalytickou aktivitu
Úrovně pH navíc řídí specificitu vazby na substrát malátdehydrogenázou v důsledku přenosu protonů v katalytickém mechanismu.[17] Bylo navrženo, aby histidinová část s hodnotou pK 7,5 hrála roli v závislosti na pH enzymu. Studie ukázaly, že vazba enolformy oxaloacetátu na malátdehydrogenázu: NADH komplex se při vyšších hodnotách pH tvoří mnohem rychleji.[12] Kromě toho je vazba L-malátu na malátdehydrogenázu podporována za alkalických podmínek. V důsledku toho se neprotonovaná forma malátdehydrogenázy přednostně váže na L-malát a enolovou formu oxaloacetátu. Naproti tomu bylo zjištěno, že D-malát, hydroxymalonát a ketoforma oxaloacetátu se vážou výlučně na protonovanou formu enzymu. Konkrétně, když je histidin protonován, může His zbytek tvořit vodíkovou vazbu s karbonylovým kyslíkem substrátu, který posune elektronovou hustotu pryč od kyslíku a zvýší jeho náchylnost k nukleofilnímu útoku hydridem. To podporuje vazbu malátdehydrogenázy na tyto substráty. Výsledkem je, že při nižších hodnotách pH se malátdehydrogenáza přednostně váže na D-malát, hydroxymalonát a keto-oxaloacetát.[18]
Alosterická regulace
Vzhledem k tomu, že malátdehydrogenáza je úzce spjata s cyklem kyseliny citronové, studie navrhly a experimentálně prokázaly, že citrát je alosterickým regulátorem malátdehydrogenázy v závislosti na koncentracích L-malátu a NAD+. To může být způsobeno odchylkami pozorovanými v kinetickém chování malátdehydrogenázy při vysokých koncentracích oxaloacetátu a L-malátu. Pokusy to ukázaly Citrát může alostericky aktivovat i inhibovat enzymatickou aktivitu malátdehydrogenázy. Bylo prokázáno, že citrát inhibuje oxidaci L-malátu, když jsou nízké hladiny L-malátu a NAD+. Avšak v přítomnosti vysoké hladiny malátu a NAD+Citrát může stimulovat produkci oxaloacetátu. Ačkoli je malátdehydrogenáza typicky považována za reverzibilní enzym, předpokládá se, že na enzymu existuje alosterické regulační místo, kde se citrát může vázat a řídit rovnováhu reakce v obou směrech.[19]
Bylo také prokázáno, že glutamát inhibuje aktivitu malátdehydrogenázy. Dále se ukázalo, že alfa ketoglutarátdehydrogenáza může interagovat s mitochondriální aspartátaminotransferázou za vzniku komplexu, který se pak může vázat na malátdehydrogenázu a vytváří ternární komplex, který reverzuje inhibiční účinek na enzymatickou aktivitu malátdehydrogenázy glutamátem. Tvorba tohoto komplexu navíc umožňuje glutamátu reagovat s aminotransferázou bez ovlivnění aktivity malátdehydrogenázy. Tvorba tohoto ternárního komplexu také usnadňuje uvolňování oxaloacetátu z malátdehydrogenázy na aminotransferázu. Kineticky bylo prokázáno, že vazba malátdehydrogenázy na binární komplex alfa ketoglutarátdehydrogenázy a aminotrannferázy zvyšuje reakční rychlost malátdehydrogenázy, protože Km malátdehydrogenázy je snížena, pokud je vázána jako součást tohoto komplexu.[20]
Interaktivní mapa cest
Kliknutím na geny, bílkoviny a metabolity níže zobrazíte odkazy na příslušné články.[§ 1]
- ^ Interaktivní mapu cest lze upravit na WikiPathways: „GlycolysisGluconeogenesis_WP534“.
Reference
- ^ A b Minárik P, Tomásková N, Kollárová M, Antalík M (září 2002). "Malátdehydrogenázy - struktura a funkce". Obecná fyziologie a biofyzika. 21 (3): 257–65. PMID 12537350.
- ^ Musrati RA, Kollárová M, Mernik N, Mikulásová D (září 1998). "Malátdehydrogenáza: distribuce, funkce a vlastnosti". Obecná fyziologie a biofyzika. 17 (3): 193–210. PMID 9834842.
- ^ Chapman AD, Cortés A, Dafforn TR, Clarke AR, Brady RL (leden 1999). „Strukturní základ substrátové specificity u malátdehydrogenáz: krystalová struktura ternárního komplexu prasečí cytoplazmatické malátdehydrogenázy, alfa-ketomalonátu a tetrahydoNAD“. Journal of Molecular Biology. 285 (2): 703–12. doi:10.1006 / jmbi.1998.2357. PMID 10075524.
- ^ Madern D (červen 2002). „Molekulární evoluce v superrodině L-malátu a L-laktátdehydrogenázy“. Journal of Molecular Evolution. 54 (6): 825–40. Bibcode:2002JMolE..54..825M. doi:10.1007 / s00239-001-0088-8. PMID 12029364. S2CID 469660.
- ^ Banaszak LJ, Bradshaw RA (1975). "Malátdehydrogenáza". In Boyer PD (ed.). Enzymy. 11 (3. vyd.). New York: Academic Press. 369–396.
- ^ A b C Goward CR, Nicholls DJ (říjen 1994). „Malátdehydrogenáza: model pro strukturu, vývoj a katalýzu“. Věda o bílkovinách. 3 (10): 1883–8. doi:10.1002 / pro.5560031027. PMC 2142602. PMID 7849603.
- ^ McAlister-Henn L (květen 1988). "Evoluční vztahy mezi malátdehydrogenázami". Trendy v biochemických vědách. 13 (5): 178–81. doi:10.1016/0968-0004(88)90146-6. PMID 3076279.
- ^ Cendrin F, Chroboczek J, Zaccai G, Eisenberg H, Mevarech M (duben 1993). „Klonování, sekvenování a exprese genu kódujícího malátdehydrogenázu extrémně halofilní archaebakterie Haloarcula marismortui v Escherichia coli“. Biochemie. 32 (16): 4308–13. doi:10.1021 / bi00067a020. PMID 8476859.
- ^ Hall MD, Levitt DG, Banaszak LJ (srpen 1992). „Krystalová struktura malátdehydrogenázy Escherichia coli. Komplex apoenzymu a citrátu při rozlišení 1,87 A“. Journal of Molecular Biology. 226 (3): 867–82. doi:10.1016 / 0022-2836 (92) 90637-Y. PMID 1507230.
- ^ Lamzin VS, Dauter Z, Wilson KS (květen 1994). „Dehydrogenace přes zrcadlo“. Přírodní strukturní biologie. 1 (5): 281–2. doi:10.1038 / nsb0594-281. PMID 7664032. S2CID 26167967.
- ^ A b Voet D, Voet JG, Pratt CW (2015). Základy biochemie: Život na molekulární úrovni (4. vydání). Hoboken, NJ: Wiley. str. 574–5. ISBN 978-0-470-54784-7.
- ^ A b Bernstein LH, Everse J (prosinec 1978). „Studie mechanismu reakce malátdehydrogenázy“ (PDF). The Journal of Biological Chemistry. 253 (24): 8702–7. PMID 31361.
- ^ Waldman AD, Hart KW, Clarke AR, Wigley DB, Barstow DA, Atkinson T, Chia WN, Holbrook JJ (leden 1988). „Použití geneticky upraveného tryptofanu k identifikaci pohybu domény laktátdehydrogenázy B. stearothermophilus s procesem, který omezuje ustálený stav přeměny enzymu“. Sdělení o biochemickém a biofyzikálním výzkumu. 150 (2): 752–9. doi:10.1016 / 0006-291X (88) 90455-X. PMID 3422557.
- ^ Hung GC, Brown CR, Wolfe AB, Liu J, Chiang HL (listopad 2004). „Odbourávání glukoneogenních enzymů fruktóza-1,6-bisfosfatáza a malátdehydrogenáza je zprostředkováno odlišnými proteolytickými cestami a signálními událostmi.“. The Journal of Biological Chemistry. 279 (47): 49138–50. doi:10,1074 / jbc.M404544200. PMID 15358789.
- ^ Ukazuje TB, Chapman VM, Ruddle FH (prosinec 1970). "Mitochondriální malát dehydrogenáza a jablečný enzym: Mendelovy zděděné elektroforetické varianty u myši". Biochemická genetika. 4 (6): 707–18. doi:10.1007 / BF00486384. PMID 5496232. S2CID 35435579.
- ^ Wood DC, Jurgensen SR, Geesin JC, Harrison JH (březen 1981). "Interakce podjednotek v mitochondriální malátdehydrogenáze. Kinetika a mechanismus reasociace". The Journal of Biological Chemistry. 256 (5): 2377–82. PMID 7462244.
- ^ Dasika SK, Vinnakota KC, Beard DA (leden 2015). "Stanovení katalytického mechanismu pro mitochondriální malátdehydrogenázu". Biofyzikální deník. 108 (2): 408–19. doi:10.1016 / j.bpj.2014.11.3467. PMC 4302198. PMID 25606688.
- ^ Lodola A, Shore JD, Parker DM, Holbrook J (prosinec 1978). „Malátdehydrogenáza cytosolu. Kinetické zkoumání mechanismu reakce a srovnání s laktátdehydrogenázou“. The Biochemical Journal. 175 (3): 987–98. doi:10.1042 / bj1750987. PMC 1186162. PMID 217361.
- ^ Gelpí JL, Dordal A, Montserrat J, Mazo A, Cortés A (duben 1992). „Kinetické studie regulace mitochondriální malátdehydrogenázy citrátem“. The Biochemical Journal. 283 (Pt 1) (Pt 1): 289–97. doi:10.1042 / bj2830289. PMC 1131027. PMID 1567375.
- ^ Fahien LA, Kmiotek EH, MacDonald MJ, Fibich B, Mandic M (srpen 1988). „Regulace aktivity malátdehydrogenázy interakcí glutamátu, citrátu, alfa-ketoglutarátu a multienzymu“ (PDF). The Journal of Biological Chemistry. 263 (22): 10687–97. PMID 2899080.
Další čtení
- Guha A, Englard S, Listowsky I (únor 1968). "Hovězí srdce, jablečné dehydrogenázy. VII. Reaktivita sulfhydrylových skupin a konformace supernatantního enzymu". The Journal of Biological Chemistry. 243 (3): 609–15. PMID 5637713.
- McReynolds MS, Kitto GB (únor 1970). "Čištění a vlastnosti Drosophila malát dehydrogenázy". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Enzymologie. 198 (2): 165–75. doi:10.1016/0005-2744(70)90048-3. PMID 4313528.
- Wolfe RG, Neilands JB (červenec 1956). "Některé molekulární a kinetické vlastnosti srdeční jablečné dehydrogenázy". The Journal of Biological Chemistry. 221 (1): 61–9. PMID 13345798.
externí odkazy
- Malát + dehydrogenáza v americké národní lékařské knihovně Lékařské předměty (Pletivo)