Penicillium digitatum - Penicillium digitatum

Penicillium digitatum
Penicillium digitatum orange.jpg
Vědecká klasifikace Upravit
Království:Houby
Divize:Ascomycota
Třída:Eurotiomycetes
Objednat:Eurotiales
Rodina:Trichocomaceae
Rod:plísně Penicillium
Druh:
P. digitatum
Binomické jméno
Penicillium digitatum
Synonyma
  • Aspergillus digitatus Pers.
  • Monilia digitata Pers.

Penicillium digitatum (/ Pˌnɪˈsɪlɪm / digitatum /) je a mezofilní houba nachází se v půdě oblastí produkujících citrusy.[1][2][3] Je to hlavní zdroj posklizňového rozpadu v ovoci a je zodpovědný za rozšířenou posklizňovou chorobu v Citrus ovoce známé jako zelená hniloba nebo zelená plíseň.[1][4][5]V přírodě to nekrotrofní rána patogen roste dovnitř vlákna a rozmnožuje se nepohlavně prostřednictvím výroby konidiofory a konidie.[1][6][7] Nicméně, P. digitatum lze pěstovat také v laboratorním prostředí.[1] Vedle svého patogenního životního cyklu P. digitatum podílí se také na dalších interakcích mezi lidmi, zvířaty a rostlinami a v současné době se používá při výrobě imunologicky mykologické detekční testy pro potravinářský průmysl.[1][8][9]

Historie a taxonomie

Penicillium digitatum je druh v rámci Ascomycota rozdělení Houby. Jméno rodu plísně Penicillium pochází ze slova „penicillus“, což znamená kartáč, odkazující na rozvětvující se vzhled nepohlavních reprodukčních struktur nalezených v tomto rodu.[10] Jako druh P. digitatum byl poprvé zaznamenán jako Aspergillus digitatus podle Christiaan Hendrik Persoon v 1794 kdo později přijal jméno Monilia digitata v Synopsis methodica fungorum (1801).[11] Synonymum M. digitata lze také nalézt ve spisech Elias Magnus Fries v Systema mycologicum (1832).[12] Současný binomický název však pochází ze spisů Pier Andrea Saccardo, zejména Fungi italici autographie delineati et colorati (1881).[12]

Růst a morfologie

V přírodě, P. digitatum přijímá vláknitou formu vegetativního růstu a vytváří úzkou přepážku hyfy.[13] Hyphal buňky jsou haploidní, ačkoli jednotlivé hyfální oddíly mohou obsahovat mnoho geneticky identických jádra.[14] Během reprodukčních fází svého životního cyklu P. digitatum reprodukuje nepohlavně produkcí nepohlavních spor nebo konidie.[13] Konidie se přenášejí na stonku zvaném konidiofor, který se může objevit buď z kousku vzdušných hyf, nebo ze sítě hyf.[1][13] Conidiophore je obvykle asymetrická, jemná struktura s hladkými, tenkými stěnami.[1][2] Velikosti se mohou pohybovat od 70 do 150 μm na délku.[1] Během vývoje se conidiophore může větvit do tří rami za vzniku terverticilátové struktury, i když jsou často pozorovány biverticiláty a další nepravidelné struktury.[1] Na konci každého rami se nachází další sada větví zvaných metulae. Počet metulae se mění s jejich velikostmi v rozmezí od 15–30 × 4–6 μm.[2] Na distálním konci každé metuly se tvoří struktury nesoucí konidium zvané phialidy. Fialidy mohou mít tvar od baňkového až po válcovitý a mohou mít délku 10–20 μm.[1] Vyrobené konidie jsou zase hladké s tvarem, který se může pohybovat od sférického až po válcový, i když je často vidět oválný tvar.[1][2] Jsou 6–15 μm dlouhé a vyrábějí se v řetězcích, přičemž nejmladší jsou v základně každého řetězce.[1][13] Každé konidium je haploidní a nese pouze jedno jádro.[14] Sexuální reprodukce v P. digitatum nebyl pozorován.[14]

Penicillium digitatum může také růst na různých laboratorních médiích. Na Czapek kvasnicový extrakt agarové médium při 25 ° C rostou bílé kolonie v rovině a dosahují sametově až hluboce flokózové struktury s velikostmi kolonií o průměru 33–35 mm.[1] Na tomto médiu se produkují olivové konidie.[1] Zadní strana desky může být bledá nebo mírně zabarvená do hnědé.[1] Na médiu se sladovým extraktem při 25 ° C je růst rychlý, ale vzácný a vytváří sametový povrch.[1][2] Zpočátku jsou kolonie žlutozelené, ale v důsledku konidiální produkce se nakonec změní na olivové.[2] Průměr kolonií se může pohybovat od 35 do 70 mm.[1] Zadní strana destičky je podobná jako u média Czapek Yeast Extract Agar.[1] Na 25% agaru s glycerol-dusičnanem při 25 ° C je růst kolonií rovinný, ale vyvíjí se v think gel s průměrem kolonií v rozmezí 6–12 mm.[1] Zadní strana talíře je popisována jako bledá nebo olivová.[1] Při 5 ° C podporuje 25% glycerolnitrátový agar klíčení a koloniální růst až do průměru 3 mm.[1] Tento druh neroste při 37 ° C.[1] Na agaru kreatin-sacharóza při 25 ° C se průměr velikosti kolonií pohybuje od 4 do 10 mm.[1] Růst je omezený a střední pH zůstává kolem 7.[1] Na zadní straně desky není zaznamenána žádná změna.[1] Růst na médiu obsahujícím kousky pomerančového ovoce po dobu sedmi dnů při pokojové teplotě vede k rozpadu ovoce doprovázenému charakteristickým zápachem.[1] Po 14 dnech při teplotě místnosti je rubová strana bezbarvá až světle hnědá.[1]

Ekologie

Penicillium digitatum se nachází v půdě oblastí pěstujících citrusové plody, převládajících v oblastech s vysokou teplotou.[1][2] V přírodě se často vyskytuje vedle plodů, které infikuje, čímž vytváří druhy v rodu Citrus jeho hlavní ekosystém.[1][2] Pouze u těchto druhů P. digitatum může dokončit svůj životní cyklus jako nekrotrofní.[6][14] Nicméně, P. digitatum byl také izolován z jiných zdrojů potravy.[1] Tyto zahrnují lískové oříšky, pistáciové oříšky, ořechy kola, Černá olivy, rýže, kukuřice a maso.[1] Nízké hladiny byly zaznamenány také v jihovýchodní Asii arašídy, sójové boby a čirok.[1]

Fyziologie

Penicillium digitatum je mezofilní houba, rostoucí od 6–7 ° C (43–45 ° F) do maximálně 37 ° C (99 ° F), s optimální teplotou růstu při 24 ° C (75 ° F).[1][3] S ohledem na vodní aktivita, P. digitatum má relativně nízkou toleranci pro osmotický stres. Minimální aktivita vody potřebná pro růst při 25 ° C (77 ° F) je 0,90, při 37 ° C (99 ° F) je 0,95 a při 5 ° C (41 ° F) je 0,99.[1] Klíčení nenastává při vodní aktivitě 0,87.[1] Pokud jde o chemikálie, které ovlivňují růst hub, minimální inhibiční koncentrace růstu kyselina sorbová je 0,02–0,025% při pH 4,7 a 0,06–0,08% při pH 5,5.[1] Thiamin Na druhé straně bylo pozorováno, že s účinkem zrychluje růst hub ko-metabolicky vylepšena za přítomnosti tyrosin, kasein nebo zinek kov.[8] Pokud jde o uhlíkovou výživu, sladový cukr, octová kyselina, kyselina šťavelová a kyselina vinná podporovat malý, pokud vůbec nějaký, růst.[8] Nicméně, glukóza, fruktóza, sacharóza, galaktóza, kyselina citronová a kyselina jablečná všichni udržují růst hub.[8]

Produkce ethylen přes Cyklus kyseliny citronové byl pozorován ve statických kulturách a je doporučeno jej připojit myceliální rozvoj.[15] Přidání methionin inhibuje takové kultury, ale může být použit pro produkci ethylenu po fázi zpoždění v třepaných kulturách.[15] Produkce pozorovaná v třepaných kulturách může být inhibována aktinomycin D a cykloheximid a modulován anorganický fosfát.[15] Kromě toho bylo prokázáno, že aminoethoxyvinylglycin a methoxyvinylglycin inhibují jak třepání, tak statické kultury.[15] Produkce mykotoxiny nebo sekundární metabolity podle P. digitatum nebyl pozorován, i když se ukázalo, že tento druh je toxický jak pro krevety, tak pro kuře embrya.[1]

S ohledem na fungicidní tolerance, jsou známy kmeny P. digitatum odolný vůči různým běžně používaným fungicidům.[1] Byly podány zprávy o fungicidech thiabendazol, benomyl, imazalil, natrium-o-fenylfenát a fungistatikum, bifenyl, v případě bifenylu není nutná předchozí léčba.[1][2] Mechanismus P. digitatum Předpokládá se, že rezistence na imazalil spočívá v nadměrné expresi sterol 14α-demethylázy (CYP51). protein způsobeno vložením 199 párů bází do promotér oblast CYP51 gen a / nebo duplikací genu CYP51.[16]

Lidská patogenita

Druhy v rámci rodu plísně Penicillium obecně nezpůsobují onemocnění u lidí.[17] Jelikož jsou však některé druhy nejběžnějším výrobcem plísní pro vnitřní použití, mohou se při dlouhodobé expozici i pro jednotlivce, kteří jsou imunokompromitovaný nebo přecitlivělí na určité části houby.[17][18] Výtrusy, proteolytické enzymy a glykoproteiny patří mezi složky běžně uváděné jako alergeny u lidí a zvířecích modelů.[18] V této souvislosti členové plísně Penicillium byly spojovány s řadou imunologických projevů, jako jsou alergické reakce typu 1, hypersenzitivní pneumonitida (Odpovědi typu 3) a okamžité a zpožděné astma.[18]

S ohledem na P. digitatumJe známo, že tento druh generalizuje mykóza u lidí, i když výskyt takových příhod je velmi nízký.[17] Různé studie také zaznamenaly přítomnost cirkulujících protilátek na extracelulární polysacharid z P. digitatum v lidských i králičích sérech.[19] Předpokládá se, že tato přítomnost je způsobena příjmem kontaminovaného ovoce a / nebo dýcháním vzduchu kontaminovaného extracelulárním polysacharidem.[19] Pokud jde o testování na alergie, P. digitatum je přítomen v různých formulacích pro klinické testování alergie, testování alergie na plísně.[20] Byla identifikována jedna kazuistika P. digitatum jako příčina smrtelného případu zápalu plic molekulárními metodami.[17]

Interakce rostlin

Rozpady po sklizni jsou hlavním zdrojem ztráty ovoce po sklizni, nejběžnějším zdrojem Citrus rozpad ovoce jako infekce způsobená P. digitatum a P. italicum.[1][4] [5] Penicillium digitatum je zodpovědný za 90% citrusových plodů ztracených k infekci po sklizni a je považován za největší příčinu posklizňových chorob vyskytujících se u kalifornských citrusových plodů.[21] Jeho rozsáhlý dopad souvisí s posklizňovou chorobou, kterou způsobuje u citrusových plodů známých jako zelená hniloba nebo plíseň.[7] Jako patogen rány začíná chorobný cyklus, když P. digitatum konidie klíčí s uvolňováním vody a živin z místa poranění na povrchu ovoce.[7][22] Po infekci při 24 ° C následuje rychlý růst s aktivní infekcí, která proběhne do 48 hodin a počáteční nástup příznaků nastane do 3 dnů.[3][7] Jak teplota v době infekce klesá, prodleva počátečního nástupu příznaků se zvyšuje.[3] Počáteční příznaky zahrnují vlhkou depresi na povrchu, která se rozšiřuje, protože bílé mycelium kolonizuje velkou část jeho povrchu.[3] Jak začíná konidiální produkce, střed myceliální hmoty se nakonec změní na olivový.[2][3] Ke konci chorobného cyklu se ovoce nakonec zmenší a vyvine se do prázdné, suché skořápky.[2] Tento konečný výsledek se běžně používá k rozlišení P. digitatum infekce z P. italicum které vytvářejí modrozelenou formu a nakonec činí ovoce slizkým.[2]

Infekce zelenou plísní při 25 ° C (77 ° F) může trvat 3 až 5 dní, přičemž míra produkce konidií na infikované ovoce dosahuje až 1–2 miliard konidií.[22] Každoroční infekce se mohou objevit kdekoli od prosince do června a mohou probíhat v jakémkoli bodě během a po sklizni.[7] K přenosu může dojít mechanicky nebo konidiálním rozptýlením ve vodě nebo vzduchu na ovocné povrchy.[3][7] Konidie se často nacházejí v půdě, ale lze je nalézt také ve vzduchu kontaminovaných skladovacích prostor.[3] Jelikož je patogenem rány, jsou pro úspěšné ovocné infekce vyžadována poranění ovoce, přičemž k mnoha těmto zraněním dochází v důsledku nesprávného zacházení během celého procesu sklizně.[3] Zranění mohou být také způsobena jinými událostmi, jako je mráz a bodnutí hmyzem, a mohou být stejně malá jako poškození žláz s ovocnou kůží.[3][7] Padlé ovoce může být také náchylné k P. digitatum infekce, jak bylo uvedeno v Izraeli, kde P. digitatum infikuje padlé ovoce více než P. italicum.[2]

Patogenita P. digitatum se spoléhá na okyselení infikovaného ovoce.[1][23] Během rozpadu ovoce byl tento druh pozorován kyselina citronová a kyselina glukonová a sekvestr amonné ionty do jeho cytoplazma.[23] Nízké pH může pomoci při regulaci různých patogenních faktorů kódovaných geny, jako jsou polygalaktouronázy.[1][23] Navíc, P. digitatum bylo také pozorováno, že modifikuje obranné mechanismy rostlin, jako je fenylalanin amoniak lyáza v citrusových plodech, které infikuje.[23]

Úpravy chorobného cyklu P. digitatum byly indukovány experimentálně. Například, P. digitatum Bylo pozorováno, že způsobuje infekci v nezraněných plodech mechanickým přenosem, i když v takových případech byla vyžadována vyšší dávka infekce.[13] V omezené míře byla infikována také jablka.[9] Kromě patogenních interakcí P. digitatum se také podílí na přirozeném zrychlování dozrávání zelených plodů a vyvolávání epinastických reakcí u různých rostlin, jako je např brambor, rajče a slunečnice.[8]

Prevence chorob rostlin

Kontrola zelené plísně se zpočátku spoléhá na správné zacházení s ovocem před, během a po sklizni.[2][7] Spory lze omezit odstraněním padlého ovoce.[1][7] Riziko zranění lze snížit různými způsoby, včetně skladování ovoce za podmínek vysoké vlhkosti / nízké teploty a sklizně před zavlažováním nebo deštěm, aby se minimalizovala náchylnost ovoce k poškození slupky.[7] Postupy odbarvení lze také provádět při vlhkosti vyšší než 92%, aby se uzdravila zranění.[7]

Obvykle se také používá chemická kontrola ve formě fungicidů.[1] Mezi příklady patří imazalil, thiabendazol a bifenyl, které všechny potlačují reprodukční cyklus P. digitatum.[3] Posklizňové chemické ošetření obvykle sestává z praní prováděných při 40–50 ° C (104–122 ° F), které obsahují čistící prostředky, slabé zásady a fungicidy.[1] Kalifornské balírny obvykle používají fungicidní koktejl obsahující o-fenylfenát sodný, imazalil a thiabendazol.[22] V Austrálii se guazatin běžně používá, i když je tato léčba omezena na domácí trh.[1] Pokud jde o vývozní trh, Obecně uznávané jako bezpečné Látky (GRAS) jsou v současné době zkoumány jako alternativy.[1] GRAS látky jako např hydrogenuhličitan sodný, uhličitan sodný a ethanol, zobrazili schopnost ovládání P. digitatum snížením rychlosti klíčení.[24]

Odolnost proti běžným fungicidům je v současné době potlačována použitím jiných chemikálií. Například kmeny rezistentní na o-fenylfenát sodný jsou řešeny prostřednictvím formaldehyd fumigace zatímco kmeny rezistentní na imazalil jsou kontrolovány použitím pyrimethanil, fungicid také schválený pro boj s kmeny rezistentními na jiné fungicidy.[1] Vzhledem k tomu, že celosvětově roste rezistence vůči fungicidům, uvažuje se o dalších opatřeních kontroly, včetně opatření biologické kontroly. Účinná biokontrolní činidla zahrnují bakterie, jako jsou Bacillus subtilis, Pseudomonas cepacia a Pseudomonas syringae stejně jako houby jako Debaryomyces hansenii a Candida guilliermondii.[1] V pomerančích Clementines a Valencia, Candida oleophila, Pichia anomala a Candida famata bylo prokázáno, že snižují nemoc.[1][24] Navzdory schopnosti různých biokontrolních činidel vykazovat antagonistickou aktivitu nebylo prokázáno, že biokontrol poskytuje úplnou kontrolu P.digitatum a proto se běžně používá ve spojení s jiným měřítkem kontroly.[24] Alternativní opatření kontroly zahrnují éterické oleje, jako jsou Syzygium aromaticum a Lippia javanica, ultrafialový světlo, gama záření [5], Rentgenové záření vytvrzování, teplo páry a antifungální peptidy pronikající buňkami.[1][25][26]

Laboratorní identifikace

Petriho miska s koloniemi Penicillium digitatum
Penicillium digitatum rostoucí na a Petriho miska.

Penicillium digitatum lze identifikovat v laboratoři pomocí různých metod. Kmeny se obvykle pěstují po dobu jednoho týdne na třech chemicky definovaných médiích za různých teplotních podmínek.[1] Použitým médiem je agar s kvasnicovým extraktem Czapek (při 5, 25 a 37 ° C), agar se sladovým extraktem (při 25 ° C) a 25% agar s glycerolnitrátem (při 25 ° C).[1] Výsledná koloniální morfologie na těchto médiích (popsána v Růst a morfologie výše) umožňuje identifikaci P. digitatum. Úzce příbuzné druhy rodu Pencillium lze vyřešit tímto přístupem pomocí neutrálního agaru Creatine Sucrose.[1] Molekulární metody mohou také pomoci s identifikací.[1] The genomy mnoha druhů patřících do rodu plísně Penicillium zbývá je však posoudit, což omezuje použitelnost těchto metod.[1] Nakonec P. digitatum lze také makroskopicky odlišit produkcí žluto-zelených až olivových konidií a mikroskopicky přítomností velkých philad a konidií.[1]

Průmyslové použití

Penicillium digitatum se používá jako biologický nástroj při komerční výrobě latexových aglutinačních souprav.[1] Latexová aglutinace detekuje Aspergillus a plísně Penicillium druhy v potravinách připojením protilátky specifické pro extracelulární polysacharid z P. digitatum na 0,8 μm latexové kuličky.[1] Tato metoda byla úspěšná při detekci kontaminace zrn a zpracovaných potravin na hranici detekce 5–10 ng / ml antigenu.[1] Ve srovnání s jinými detekčními testy překračuje latexový aglutinační limit detekční limit Enzymově vázaný imunosorbentní test (ELISA) a je stejně účinný při detekci Aspergillus a Pencillium druh jako ergosterol výrobní test.[1] Ten však zobrazuje zvýšenou schopnost detekce Fusarium ve srovnání s latexovým aglutinačním testem.[1]

Reference

  1. ^ A b C d E F G h i j k l m n Ó p q r s t u proti w X y z aa ab ac inzerát ae af ag ah ai aj ak al dopoledne an ao ap vod ar tak jako na au av aw sekera ano az ba bb před naším letopočtem bd být bf bg bh bi bj Pitt, John I .; Hocking, Alisa D. (1985). Houby a znehodnocování potravin (3. vydání). Dordrecht: Springer. ISBN  9780387922072.
  2. ^ A b C d E F G h i j k l m n Cibule, A.H.S. "Penicillium digitatum. C.M.I. Popisy hub a bakterií č. 96". Popisy hub a bakterií. CAB International Wallingford UK.
  3. ^ A b C d E F G h i j k Smith, I.M. (1988). Evropská příručka chorob rostlin ([Online-Ausg.] Ed.). Oxford [Oxfordshire]: Blackwell Scientific Publications. ISBN  978-0632012220.
  4. ^ A b Wilson, Charles L .; Wisniewski, Michael E .; Biles, Charles L .; McLaughlin, Randy; Chalutz, Edo; Droby, Samir (01.06.1991). „Biologická kontrola posklizňových chorob ovoce a zeleniny: alternativy syntetických fungicidů“. Ochrana plodin. 10 (3): 172–177. doi:10.1016 / 0261-2194 (91) 90039-T.
  5. ^ A b C Papoutsis, Konstantinos; Mathioudakis, Matthaios; Hasperué, Joaquín; Ziogas, Vasileios (2019). „Nechemická ošetření k prevenci hniloby po sklizni citrusů způsobená Penicillium digitatum (zelená plíseň) a Penicillium italicum (modrá plíseň)“. Trendy v potravinářské vědě a technologii. 86: 479–491. doi:10.1016 / j.tifs.2019.02.053.
  6. ^ A b Marcet-Houben, Marina; Ballester, Ana-Rosa; de la Fuente, Beatriz; Harries, Eleonora; Marcos, Jose F .; González-Candelas, Luis; Gabaldón, Toni (01.01.2012). „Sekvence genomu nekrotrofní houby Penicillium digitatum, hlavní posklizňový patogen citrusů“. BMC Genomics. 13: 646. doi:10.1186/1471-2164-13-646. ISSN  1471-2164. PMC  3532085. PMID  23171342.
  7. ^ A b C d E F G h i j k Brown, G. Eldon. „Citrus Diseases-PostHarvest“ (PDF). University of Florida: IFAS Indian River Research and Education Center. University of Florida.
  8. ^ A b C d E Fergus, Charles L. (01.03.1952). „Výživa Penicillium digitatum Sacc“. Mykologie. 44 (2): 183–199. doi:10.1080/00275514.1952.12024184. JSTOR  4547585.
  9. ^ A b Problémy v General Food Research: vydání 2013. ScholarlyEditions. 2013-05-01. ISBN  9781490106892.
  10. ^ Barron, Georgi. „Penicillium italicum a Penicillium digitatum na pomeranči“. Web George Barrona o houbách.
  11. ^ "Penicillium digitatum". Mycobank. Centrum houbové biologické rozmanitosti CBS-KNAW.
  12. ^ A b Samson, Robert A; Pitt, John I (2000). Integrace moderních taxonomických metod pro klasifikaci Penicillium a Aspergillus. Amsterdam, Nizozemsko: Harwood Acad. Publ. str. 23. ISBN  978-9058231598.
  13. ^ A b C d E Peberdy, John F (1987). Penicillium a Acremonium. New York: Plenum Press. ISBN  978-0306423451.
  14. ^ A b C d Georghiou, G. P. (2012). Odolnost vůči pesticidům. Springer Science & Business Media. ISBN  9781468444667.
  15. ^ A b C d Lieberman, M. (01.01.1979). „Biosyntéza a působení ethylenu“. Roční přehled fyziologie rostlin. 30 (1): 533–591. doi:10.1146 / annurev.pp.30.060179.002533.
  16. ^ Cena, Claire L; Parker, Josie E; Warrilow, Andrew GS; Kelly, Diane E; Kelly, Steven L (2015-08-01). "Azolové fungicidy - porozumění mechanismům rezistence v zemědělských houbových patogenech". Věda o ochraně proti škůdcům. 71 (8): 1054–1058. doi:10,1002 / ps.4029. ISSN  1526-4998. PMID  25914201.
  17. ^ A b C d Oshikata, Chiyako; Tsurikisawa, Naomi; Saito, Akemi; Watanabe, Maiko; Kamata, Yoichi; Tanaka, Maki; Tsuburai, Takahiro; Mitomi, Hiroyuki; Takatori, Kosuke (2013-03-23). „Fatální pneumonie způsobená Penicillium digitatum: kazuistika“. BMC plicní medicína. 13 (1): 16. doi:10.1186/1471-2466-13-16. ISSN  1471-2466. PMC  3614886. PMID  23522080. otevřený přístup
  18. ^ A b C Halewyn, Marie-Alix; Chevalier, Pierre. "Penicillium spp". INSPQ. Institut national de santé publique. Citováno 13. listopadu 2015.
  19. ^ A b Notermans, S .; Dufrenne, J .; Wijnands, L. M .; Engel, H. W. B. (01.01.1988). „Lidské sérové ​​protilátky proti extracelulárním polysacharidům (EPS) plísní“. Journal of Medical and Veterinary Mycology. 26 (1): 41–48. doi:10.1080/02681218880000051. ISSN  0268-1218.
  20. ^ "Injekce zvířecích alergenů". Drugs.com. Hollister Stier Laboratories LLC. Citováno 13. listopadu 2015.
  21. ^ Ariza, Marta R .; Larsen, Thomas O .; Duus, Jens Ø .; Barrero, Alejandro F. (01.10.2002). „Metabolity Penicillium digitatum na syntetických médiích a citrusových plodech“. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 50 (22): 6361–6365. doi:10.1021 / jf020398d. ISSN  0021-8561.
  22. ^ A b C Holmes, GJ; Eckert, JW (1999). „Citlivost Penicillium digitatum a P. italicum na posklizňové citrusové fungicidy v Kalifornii“. Fytopatologie. 89 (9): 716–21. doi:10.1094 / PHYTO.1999.89.9.716. PMID  18944698.
  23. ^ A b C d Macarisin, D; Cohen, L; Eick, A; Rafael, G; Belausov, E; Wisniewski, M; Droby, S (2007). „Penicillium digitatum potlačuje produkci peroxidu vodíku v hostitelské tkáni během infekce citrusovým ovocem“. Fytopatologie. 97 (11): 1491–500. doi:10.1094 / PHYTO-97-11-1491. PMID  18943520.
  24. ^ A b C Janisiewicz, Wojciech J .; Korsten, Lise (01.01.2002). „Biologická kontrola nemocí plodů po sklizni“. Roční přehled fytopatologie. 40 (1): 411–441. doi:10.1146 / annurev.phyto.40.120401.130158. PMID  12147766.
  25. ^ Sivakumar, Dharini; Bautista-Baños, Silvia (01.10.2014). „Přezkoumání používání éterických olejů pro kontrolu rozpadu po sklizni a udržování kvality ovoce během skladování“. Ochrana plodin. 64: 27–37. doi:10.1016 / j.cropro.2014.05.012.
  26. ^ Muñoz, Alberto; Gandía, Mónica; Harries, Eleonora; Carmona, Lourdes; Přečtěte si, Nick D .; Marcos, Jose F. (01.01.2013). „Pochopení mechanismu působení antifungálních peptidů pronikajících do buněk pomocí racionálně navrženého hexapeptidu PAF26 jako modelu“. Recenze houbové biologie. Odhalení různých způsobů působení a biologických rolí antifungálních peptidů. 26 (4): 146–155. doi:10.1016 / j.fbr.2012.10.003.

externí odkazy