Stálost vůči kyselinám - Acid-fastness
Stálost vůči kyselinám je fyzická vlastnost jisté bakteriální a eukaryotický buňky, stejně jako některé subcelulární struktury, konkrétně jejich odolnost vůči odbarvování kyselinami během laboratoře barvení postupy.[1][2] Jakmile jsou tyto organismy obarveny jako součást vzorku, mohou odolávat odbarvovacím postupům na bázi kyselin a / nebo ethanolu, které jsou běžné v mnoha protokolech o barvení, proto název kyselinově rychlé.[2]
Mechanismy odolnosti vůči kyselinám se u jednotlivých druhů liší, ačkoli nejznámější příklad je v rodu Mycobacterium, který zahrnuje druhy odpovědné za tuberkulózu a malomocenství. Stálost vůči kyselinám Mykobakterie je kvůli vysoké kyselina mykolová obsah jejich buněčné stěny, který je zodpovědný za vzor barvení špatné absorpce následovaný vysokou retencí. Některé bakterie mohou být také částečně kyselé, např Nocardia.
Kyselinovzdorné organismy je obtížné charakterizovat pomocí standardních mikrobiologických technik, ačkoli je lze obarvit pomocí koncentrovaných barviv, zvláště když je proces barvení kombinován s teplem. Některé, jako např Mykobakterie, lze obarvit Gramovo barvení, ale neberou dobře krystalovou violet a vypadají tak světle fialově, což může ještě potenciálně vést k nesprávné grampozitivní identifikaci.[3]
Nejběžnější barvicí technikou používanou k identifikaci kyselinovzdorných bakterií je Skvrna Ziehl-Neelsen, ve kterých jsou kyselinovzdorné druhy obarveny jasně červeně a jasně vystupují na modrém pozadí. Další metodou je Kinyounova metoda, ve kterém jsou bakterie obarveny jasně červeně a jasně vystupují na zeleném pozadí. Rychle kyselé Mykobakterie lze také zobrazit pomocí fluorescenční mikroskopie pomocí specifických fluorescenčních barviv (barvivo auramin-rhodamin, například).[4] Vejce parazitické plicní motolice Paragonimus westermani jsou ve skutečnosti zničeny skvrnou, což může bránit diagnostice u pacientů, kteří mají příznaky podobné TBC[Citace je zapotřebí ].
Některé techniky rychlého barvení kyselinou
- Skvrna Ziehl – Neelsen (klasické a upravené typy bělidel)[5]
- Kinyounská skvrna
- Pro barvoslepé (nebo na pozadí, kde je detekce červených bakterií obtížná), Victoria modrá lze nahradit carbol fuchsin a kyselina pikrová lze použít jako skvrnu namísto methylenová modř a lze použít zbytek techniky Kinyoun.[6]
- Různé techniky barvení bakteriálních spór pomocí Kenyonu, např.
- Moellerova metoda
- Dornerova metoda[7] (odbarvovač kyselého alkoholu) bez Schaeffer – Fulton[8] modifikace (odbarvit vodou)[9]
- Metoda čisticího prostředku používající neiontový Tergitol 7 polyglykol ether povrchově aktivní látky typu NP-7 [10]
- Různé techniky barvení bakteriálních spór pomocí Kenyonu, např.
- Fite skvrna[11]
- Ellis a Zabrowarny skvrna[15][16] (bez fenolu / kyseliny karbolové)
- Skvrna Auramin-rhodamin
- Skvrna na Auramin fenol
Pozoruhodné kyselinovzdorné struktury
Velmi málo struktur je kyselinovzdorných; díky tomu je barvení na stálost vůči kyselinám zvláště užitečné při diagnostice. Následují pozoruhodné příklady struktur, které jsou kyselinovzdorné nebo modifikované kyselinovzdorné:
- Všechno mykobakterie - M. tuberculosis, M. leprae, M. smegmatis a atypické Mycobacterium
- Aktinomycety (zejména některé aerobní) s kyselinou mykolovou v buněčné stěně (pozn Streptomyces nemít); nesmí být zaměňována s Actinomyces, což je nekysele rychlý rod aktinomycete
- Nocardia (slabě kyselinově rychlý; odolává odbarvování se slabšími koncentracemi kyseliny)
- Rhodococcus
- Gordonia (aktinomycete)
- Tsukamurella
- Dietzia
- Vedoucí spermie
- Bakteriální spory, viz Endospore
- Legionella micdadei
- Určité buněčné inkluze, např.
- Cytoplazmatická inkluzní tělíska viděná v
- Neurony ve vrstvě 5 mozkové kůry neuronální ceroidní lipofuscinóza (Battenova choroba ).
- Jaderná inkluzní tělesa vidět v
- Otrava olovem
- Otrava vizmutem.
- Cytoplazmatická inkluzní tělíska viděná v
- Oocysty některých kokcidián paraziti ve stolici, například:
- Několik dalších parazitů:
- Sarcocystis
- Taenia saginata vejce skvrna dobře, ale Taenia solium vejce ne (lze použít k rozlišení)
- Hydatidové cysty, zejména jejich "háčky"skvrna nepravidelně skvrnou ZN, ale vyzařuje jasně červenou fluorescenci pod zeleným světlem a může pomoci detekci na středně těžkém pozadí nebo s omezenými háčky.[20]
- Plísňové kvasinkové formy jsou nekonzistentně obarveny Acid-fast barvivem, které je pro houby považováno za barvivo s úzkým spektrem.[21] Ve studii o kyselé stálosti hub[22] 60% blastomyces a 47% histoplazmy vykázalo pozitivní cytoplazmatické barvení buněk podobných kvasinkám a Cryptococcus nebo candida se nezbarvily a velmi vzácné barvení bylo pozorováno v endocpórách Coccidioides.
Reference
- ^ Madison B (2001). "Aplikace skvrn v klinické mikrobiologii". Biotech Histochem. 76 (3): 119–25. doi:10.1080/714028138. PMID 11475314.
- ^ A b Ryan KJ; Ray CG, eds. (2004). Sherris Medical Microbiology (4. vydání). McGraw Hill. ISBN 0-8385-8529-9.
- ^ Reynolds, Jackie; Moyes, Rita B .; Breakwell, Donald P. (listopad 2009). "Diferenciální barvení bakterií: kyselé rychlé barvení". Současné protokoly v mikrobiologii. Dodatek 3: Dodatek 3H. doi:10.1002 / 9780471729259.mca03hs15. ISSN 1934-8533. PMID 19885935. S2CID 45685776.
- ^ Abe C (2003). "[Standardizace laboratorních testů na tuberkulózu a testování jejich odborné způsobilosti]". Kekkaku. 78 (8): 541–51. PMID 14509226.
- ^ „Acid fast / Auramine-rhodamine“. www.pathologyoutlines.com.
- ^ Teorie a praxe histologických technik, John D Bancroft, 6. vydání, p314
- ^ Dorner, W. 1926. Un procédé simple pour la colouration des spores. Le Lait 6: 8–12.
- ^ Schaeffer AB, Fulton M (1933). "Zjednodušená metoda barvení endospór". Věda. 77 (1990): 194. Bibcode:1933Sci .... 77..194S. doi:10.1126 / science.77.1990.194. PMID 17741261.
- ^ Endospore Stain Protocol z webu Americké společnosti pro mikrobiologii Archivováno 01.06.2012 na Wayback Machine
- ^ http://daignet.de/site-content/die-daig/fachorgan/2007-1/ejomr-2007_8-pdfs/S.356_Hayama.pdf
- ^ "Stainsfile - Fite". stainsfile.info. Archivovány od originál dne 18. 11. 2011. Citováno 2012-06-28.
- ^ „Protokol o barvení Fite-Faraco pro malomocné bacily“. www.ihcworld.com.
- ^ „Stainsfile - Fite Faraco“. stainsfile.info. Archivovány od originál dne 18. 11. 2011. Citováno 2012-06-28.
- ^ „Stainsfile - Wade Fite“. stainsfile.info. Archivovány od originál dne 18. 11. 2011. Citováno 2012-06-28.
- ^ Ellis, R. C .; Zabrowarny, L. A. (1993). „Bezpečnější metoda barvení pro kyselě rychlé bacily“. Journal of Clinical Pathology. 46 (6): 559–560. doi:10.1136 / jcp.46.6.559. PMC 501296. PMID 7687254.
- ^ „Archivovaná kopie“. Archivovány od originál dne 04.01.2006. Citováno 2006-03-11.CS1 maint: archivovaná kopie jako titul (odkaz)
- ^ Garcia LS, Bruckner DA, Brewer TC, Shimizu RY (červenec 1983). „Techniky pro izolaci a identifikaci oocyst Cryptosporidium ze vzorků stolice“. J. Clin. Microbiol. 18 (1): 185–90. doi:10.1128 / JCM.18.1.185-190.1983. PMC 270765. PMID 6193138.
- ^ Ng E, Markell EK, Fleming RL, Fried M (září 1984). „Demonstrace Isospora belli kyselinovzdorným barvením u pacienta se syndromem získané imunodeficience“. J. Clin. Microbiol. 20 (3): 384–6. doi:10.1128 / JCM.20.3.384-386.1984. PMC 271334. PMID 6208216.
- ^ Ortega YR, Sterling CR, Gilman RH, Cama VA, Díaz F (květen 1993). "Cyclospora species - nový prvok prvoků lidí". N. Engl. J. Med. 328 (18): 1308–12. doi:10.1056 / NEJM199305063281804. PMID 8469253.
- ^ Clavel A, Varea M, Doiz O, López L, Quílez J, Castillo FJ, Rubio C, Gómez-Lus R (1999). „Vizualizace hydatidových prvků: srovnání několika technik“. J Clin Microbiol. 37 (5): 1561–3. doi:10.1128 / JCM.37.5.1561-1563.1999. PMC 84828. PMID 10203521.
- ^ „Produkty Dako - Agilent“ (PDF). www.dako.com. Citováno 3. prosince 2018.
- ^ Mzdy ds, Wear dJ. kyselinovzdornost hub při blastomykóze a histoplazmóze. Arch Pathol Lab Med 1982; 106: 440-41.
Příklady online protokolů
- Ziehl-Neelsen protokol (PDF formát).
- Střídat Ellis & Zabrowarny metoda pro barvení AFB.