Používání fungicidů ve Spojených státech - Fungicide use in the United States - Wikipedia

Tento článek shrnuje různé plodiny, jaké běžné houbové problémy mají a jak by se měl používat fungicid, aby se zmírnilo poškození a ztráta plodiny. Tato stránka také popisuje, jak konkrétní houbové infekce ovlivňují plodiny přítomné ve Spojených státech.

Mandle

Alternaria listová skvrna

Příznaky Alternaria listová skvrna vypadají jako léze s pálením na listech. Středy těchto lézí zčernají houbovou sporulací. Tato infekce může vést ke smrti stromů během 3–4 let od prvního vážného vzplanutí. Sady v oblastech s vysokou vlhkostí způsobují největší ztrátu výnosu, často přesahující 50%.[1] Ztráta na výnosu má tendenci každoročně stoupat, protože strom každý rok po infekci zeslábne. Tři aplikace fungicidů mohou dosáhnout 60–80% kontroly listové skvrny.[2]

Anthracnose

Anthracnose nebyl viděn na Kalifornie mandle až do začátku 90. let. V roce 1996 byl rozšířen a způsobil vážné ztráty výnosů v celém státě.[3] Typické ztráty v roce 1996 byly 10–15% plodiny mandlí, přičemž u těžce postižených plodin došlo ke ztrátám 25%.[4] Za mokra se vytvářejí oranžové spórové hmoty, které vypadají jako viditelné kapičky. Léze na zralých plodech jsou rezavě oranžové a silně žvýkací. Jakmile nemocné ovoce zemře, stanou se mumiemi, které zůstanou na stromě. Patogen v těchto mumiích přezimuje.[3] 80–90% kontroly lze dosáhnout aplikací fungicidů na ochranu plodiny před začátkem dešťů. Kalifornské ministerstvo pro regulaci pesticidů odhaduje, že bez fungicidů pro kontrolu anthracnózy by produkce mandlí ve státě poklesla o 15–30%.[5]

Hnědá hniloba

Poškození od hnědá hniloba nastává několik let po zasažení infekce. Primárním příznakem je ztráta plodnice. Hnědá hniloba byla poprvé objevena na kalifornských mandlích na konci 19. století a v současné době postihuje většinu oblastí Kalifornie produkujících mandle. Hnědou hnilobu lze kontrolovat pomocí fungicidů prostřednictvím květu, aby byly chráněny květinové části před útoky hnědé hniloby.[6] Pokusy ukázaly, že 44% větviček bylo infikováno hnědou hnilobou, když byly plodiny ponechány neošetřené, ve srovnání s pouhými 4%, když byly plodiny ošetřeny.[7]

Koruna a kořenová hniloba

Koruna a kořenová hniloba mandlí je způsobeno nejméně 14 různými Phytophthora druh. Riziko infekce kořenů nebo korun je největší během chladných až středních teplot s prodlouženým nebo častým nasycením půdy.[6] Strom infikovaný Phytophthora může buď projít obdobím pomalého úpadku, které může trvat roky, nebo se může na jaře s příchodem teplého počasí náhle zhroutit a zemřít.[8] Nakonec listy spadnou, terminální výhonky odumírají a následuje smrt stromu. Jakmile je infekce v kořenu nebo koruně, může se rozšířit do koruny, kmene nebo větví.[8] V současné době je hniloba koruny a kořenů problémem ovlivňujícím 20% kalifornských mandlových sadů s potenciálními ztrátami na výnosu 50%.[6]

Zelená hniloba ovoce

Zelená hniloba ovoce lze nalézt prakticky ve všech oblastech Kalifornie produkujících mandle.[9] Zelená hniloba je obvykle kontrolována fungicidy, které se používají k potlačení jiných houbových chorob, ke kterým dochází během kvetení. Pouze při nižších teplotách a vysoké vlhkosti se pěstitelům mandlí doporučuje provádět fungicidní aplikace speciálně pro tuto nemoc.[8] Pokud není hniloba zeleného ovoce ponechána bez ošetření, může způsobit až 10% ztrátu výnosu.[6]

Plíseň listů

Plíseň listů mandlí byl poprvé objeven v roce 1950 a do roku 1983 se rozšířil po celé zemi Údolí Sacramento.[8][9] Plíseň mandlového listu je charakterizována smrtí listů po celé léto.[10] Houba interferuje s vedením vody v listu. Na podzim a v zimě jsou spící pupeny zabity rozšířením léze a na jaře jsou zabity květiny.[10] Opakované útoky plísně listů, i když jen zřídka zabíjejí více než 20% listů, nakonec snižují sílu stromu. Pokusy ukázaly, že použití ziram a captan může snížit výskyt plísní listů o 75–80% u ošetřených stromů.[10]

Rez

Mandle rez je onemocnění mandlových stromů, které je charakterizováno úhlově žlutými skvrnami listů na horních plochách listů a rezavě hnědými hromadami spor na spodních plochách listů.[6] Poprvé byl objeven v horní oblasti údolí Sacramento v Kalifornii, ale nyní se následně rozšířil po celém Sacramentu i San Joaquin údolní sady.[9] Obvykle se objevuje v letní a podzimní sezóně a bylo prokázáno, že způsobuje rychlou a rozsáhlou defoliaci stromů.[6] Ošetření maneb a síra v raných ročních obdobích (obvykle na jaře a v létě) bylo prokázáno, že významně snižují výskyt a závažnost ohnisek rzi.[3][9]

Strup

Mandlová strup byl poprvé dokumentován v mandlových sadech v padesátých letech. To se však nestalo závažnou chorobou, dokud se v 80. letech stalo populární zavlažování zavlažováním.[9] Na počátku 90. let se mandlové strupy vyskytovaly v kalifornských mandlových sadech. Chrastava infikuje listy, plody a větvičky v mandlích a způsobuje vznik tmavých skvrn. Léze strupů vypadají mastně a mastně. Hlavním problémem mandlové strupy je částečné nebo úplné odlistění stromu.[9] Stejně jako u plísně listové bylo prokázáno, že použití kaptanu a ziramu snižuje celkový výskyt infekce strupem mandlí.[6]

Shot shot hole

Shot shot ovlivňuje mandle narušením jak listů, tak plodů rostliny. Může to mít za následek předčasné zrání matic a odlistění rostlin. V některých případech, zejména když na jaře přetrvává déšť, může dojít k úplnému opadání a oslabení stromů.[6] Odhady ukázaly, že přibližně 80% kalifornských mandlových akrů je infikováno touto houbou.[11] Čtyřletý výzkumný projekt Almond Board of California stanovil, že ztráty z výroby u díry se mohou pohybovat od 50 do 75%.[9] Captan v jedné až třech aplikacích byl použit jako primární fungicid v boji proti této nemoci. Bylo prokázáno, že snižuje léze na ovoce o 96%.[12]

Jablka

Brown Rot na Apple

Postřik na hubové choroby hub jablka začala v USA nějaký čas mezi 1880 a 1905.

strupovitost jabloně

Jablečný strup je způsoben houbou Venturia inaequalis. Páření mezi různými kmeny houby nastává krátce po pádu listů a během zimy se v padlých listech vyvíjejí spory. Jarní deště způsobují násilné vypouštění spór; mohou být přenášeny na velké vzdálenosti vzdušnými proudy ke květům, listím nebo mladému ovoci.[13] Spory se poté dále vyvíjejí a uvolňují se po dobu 5–9 týdnů.[14] Tyto spory klíčí a pronikají do vnějších vrstev rostliny a způsobují infekci. Houba roste pod kutikulou a nakonec praskne a vytvoří tmavě zelené léze. Počet lézí na list může být až 1–2 nebo mohou být stovky.[14] The USDA Podle odhadů Národního programu pro posuzování dopadů pesticidů na zemědělství je 100% východních jabloňových sadů napadeno chrastavitostí jablek a bez fungicidního ošetření by ztráty byly až 90%.[15] V západních sadech je infikováno 52% a ztráta výnosu jablek může činit až 22%.[11] Při použití fungicidů však experimenty ukázaly výrazné snížení procenta infikovaných jablek. Jedna studie dokázala snížit výskyt ze 77% na 2%.[16]

Hořká hniloba

Hořká hniloba je hlavní choroba na jihovýchodě USA v letních měsících, kdy je teplé a vlhké počasí.[17] Organismus má krátkou inkubační dobu a v důsledku toho se mohou rychle vyvinout epidemie hořké hniloby. Přítomnost onemocnění je nejprve indikována velmi malými světle hnědými potopenými skvrnami pod jablečnou kůží.[18] Jak houba roste a napadá více tkáně jablek, oblast se zahltí, dokud celé jablko nezhnije.[19] Kolem počátku 20. století Bordeauxská směs byla primární technikou pro kontrolu nemoci; ve 40. letech se pěstitelé přesunuli k použití syntetických chemikálií.[18][19] Bez těchto fungicidů se odhaduje, že ztráta výnosu jablek v důsledku hořké hniloby by byla až 90%.[15]

Černé neštovice

Toto onemocnění postihuje především jihovýchodní část Spojených států a je známo, že infikuje kultivary Rome Beauty, Grimes Golden, Lahodné, York Imperial, a Golden Delicious. Léze na větvičkách jsou dobře definované, kuželovité, lesklé černé otoky a na samotném plodu jsou to černé, sférické, mírně propadlé skvrny. Silně postižené listy mohou zemřít během 2 až 3 týdnů od infekce. Infikované větve budou špatně růst, brzy ztratí listy a zemřou. Černé neštovice lze potlačit stejnými fungicidními spreji, které se používají k léčbě chrastavitosti.[14]

Hniloba na konci květu

Prvním příznakem hniloby na konci květu je měkké, mokré a načervenalé zbarvení, které se objevuje v pozdních letních měsících. Jakmile hniloba přestane růst, začne vysychat a bude vypadat zapadlá.[14] Ovlivněné ovoce často předčasně poklesne. Fungicidní experimenty prokázaly sníženou incidenci léčby z 5% na méně než 0,5%.[20]

Brooksova ovocná skvrna

Brooks ovocná skvrna je menší choroba jablka a vyskytuje se většinou v severovýchodních a středoatlantických oblastech. Jakmile se ovoce poprvé objeví, objeví se nemoc jako tmavě zelené léze na plodu jablka. Jakmile se jablko začne objevovat, tyto skvrny rostou a mění se na fialové nebo zelené.[14] Plody plodů Brooks jsou obvykle potlačovány fungicidy aplikovanými během raného období krycího postřiku. Jedna studie ukázala, že jablečné sady, které nebyly ošetřeny fungicidy, měly 87% svých plodů infikovaných skvrnou potoků, zatímco pouze 1–6% stromů, které byly ošetřeny fungicidy, vykazovalo příznaky onemocnění.[21]

Plíseň ohně

Plíseň ohně byl poprvé popsán v New York na konci 18. století a přesunul se na západ s osadníky a počátkem 20. století se usadil v severoamerických oblastech produkce jablek. Zatímco ve východní produkci jablek byl vždy problém s ohněm, závažná ohniska na západě v posledních letech způsobila, že tamní pěstitelé přijali také důslednější a důraznější programy monitorování a řízení.[22] Nemoc může postihnout každou část stromu, od ovoce až po kmen.[14] Infikované stromy mohou během měsíců zemřít nebo mohou přetrvávat roky s výrazně sníženým výnosem. Kromě spáleného vzhledu částí rostlin, které dávají této nemoci jméno, budou rostlinné tkáně infikované bakteriemi vylučovat mléčný nebo červenohnědý sliz. Zpočátku měď spreje byly použity pro hubení plísní ve 30. letech, ale tato metoda měla omezený úspěch.[23] V padesátých letech streptomycin a oxytetracyklin vykazovaly ve srovnání s mědí vysoký úspěch při potlačování plísně. Od té doby se streptomycin stříkaný dvakrát až třikrát během fáze kvetení stal léčbou volby.

Padlí

Padlí je běžná houbová infekce jablek a může se vyskytovat téměř v jakémkoli klimatu pěstování jablek. Spory z hub konzervovaných přes zimu se uvolňují z rozvíjejících se listů pupenů. Spory nesené větrem infikují listy, květy a ovoce.[14] Houba se šíří, dokud nepokryje celý list, a poté doroste větvičky a zakryje je šedou plstí. Výsledkem jsou přerušené květy, snížená kvalita povrchové úpravy a snížený výnos.[24] The USDA odhaduje, že 40% jablečných sadů na východě a 50% jablečných sadů na západě je napadeno padlí.[11] Bez kontroly houby by výnosy poklesly o 65%.[15]

Kdoule rez

Kdoule rez infikuje plody jabloní, ale neovlivňuje listy. Spory kdoule rzi infikují cedrové stromy a vytvářejí válcovité hálky, ze kterých následující jaro vycházejí spórové rohy. Tyto koule mohou produkovat spory po dobu až dvaceti let. Rez kdoule je ekonomicky důležitý především tehdy, když mezi těsným shlukem a pozdně růžovými pupeny nastane delší období smáčení s průměrnou teplotou nad 10 ° C. Za těchto podmínek mohou nastat hospodářské ztráty ve velkých zeměpisných oblastech.[14] Ukázalo se, že experimenty s fungicidními postřiky poskytují úplnou kontrolu rzi.[25]

Bílá hniloba

Bílá hniloba dostává své jméno podle měkkého, vodnatého a světle zbarveného shnilého ovoce, které zbylo po napadení jablka. Houba přežívá od sezóny k sezóně v mrtvé kůře a mumifikovaném plodu jabloně. Výtrusy mohou v mrtvé kůře přežít až šest let.[26] Pěstitelům se doporučuje ošetřit bílou hnilobu, jakmile obsah cukru v ovoci dosáhne přibližně 10%. USDA odhaduje, že 20% jablečných sadů ve východních státech je infikováno plísní a že bez použití fungicidů by ztráty výnosu byly 65%.[15]

Artyčoky

Kalifornie produkuje 100% všech artyčok plodiny v USA 84% této výměry se nachází v blízkosti chladné, vlhké pobřežní oblasti Monterey Bay. Klima je zde ideální pro výrobu artyčoku.

Padlí

V roce 1984 byla údajně infikována pole artyčoků padlí poprvé. V následujících letech se nemoc nadále objevovala s každým rokem, kdy se nemoc rozšířila více než v minulosti.[27] Houba kolonizuje spodní stranu listů a vítr nese spory mezi poli.[28] Silně infikované listy předčasně změní barvu, zhroutí se a vyschnou; čímž se zmenšuje fotosyntetická plocha rostliny.

V současné době neexistují žádné registrované fungicidy, které by zajišťovaly účinnou kontrolu onemocnění v pobřežních podmínkách Kalifornie. Síra je registrována, ale ukázalo se, že je při kontrole padlí velmi neúčinná. Aby byla síra účinná, je důležité, aby teplota okolního vzduchu byla teplá. Chladné a vlhké podnebí pobřežní oblasti znamená, že síra je neúčinná při hubení padlí.[27] Výsledkem je, že od roku 1987 Kalifornie každý rok požádala o nouzovou registraci grantu EPA pro použití fungicidů při hubení padlí.

Chřest

Korunní hniloba

Korunní hniloba chřest byl poprvé zaznamenán v Kalifornii v roce 1938, kdy kalifornští pěstitelé začali hlásit slizkou oranžovožlutou chřestovou tkáň s měkkými lézemi způsobujícími po sklizni ztráty 20–30%.[29][30] Jak léze rostou, nakonec se zhroutí a scvrknou.[31] V 80. letech se ukázalo, že fungicidní ošetření metalaxyl zvýšil výnosy o 80%.[30] Dnes mefenoxam (metalaxyl -m) je primární fungicid používaný k léčbě korunní hniloby.

Fialová skvrna

Fialová skvrna byla poprvé pozorována ve Spojených státech v 80. letech. Ztráta výnosu v důsledku této nemoci je zpožděna, protože poškození růstu kapradí neovlivňuje současné výnosy, ale naopak ovlivňuje budoucí plodinu. Výsledkem poškození je defoliace jehel, snížení toku sacharidů ke kořenům a následné snížení výnosu příštího roku až o 52%.[31] Na jaře se spóry vyrobené z infikovaných plodin z předchozího roku šíří vodou a větrem do nových hostitelských rostlin.

Primární kontrolou fialové skvrny byly fungicidy EBDC, dokud zpracovatelé nezačali odmítat použití EBDC. V důsledku toho od roku 1990 výjimky pro chlorothalonil a tebuconazole v Michigan byly poskytnuty EPA pro použití na chřestu. Fungicidy se aplikují na konci sklizně a chlorothalonil se v experimentech ukázal, že redukuje fialové skvrny o 99% a zvyšuje výtěžky o 36%.[32] Ukázalo se, že toto zvýšení výnosu v důsledku kontroly fialové skvrny se pro pěstitele chřestu promítlo do čistého výnosu 200–400 $ za akr.[33]

Rez

Chřestová rzi byla poprvé hlášena v USA v roce 1896. Začala na plodinách chřestu převážně severovýchodních států a začala se přes celou zemi pohybovat na západ -[34] Pro každý následující rok byla choroba objevena v nových západních oblastech, dokud nebyla v roce 1902 poprvé hlášena v Kalifornii. Výzkum kontroly této nemoci začal experimenty se směsí Bordeaux kolem počátku 20. století. Byl zkoušen také měděný a sírový prach, ale jejich úspěch byl velmi omezený. Síra byla jediná, která měla vůbec velký úspěch.[34][35] Byly kultivovány kmeny chřestu rezistentní, ale ve 40. a 50. letech již tyto kmeny chřestu neposkytovaly odpovídající úroveň rezistence.[36] V padesátých letech 20. století byly vyvinuty zineb a mancozeb jako primární prostředek k potlačení rzi. Zineb snížil infekci o 85% a mancozeb o 97%.[37][38] Do roku 1989 se fungicidy EBDC staly nejběžnějším fungicidním prostředkem k potlačení rzi na chřestu. Poté, co EPA téměř zrušila používání EBDC na chřestu, se však mnoho zpracovatelů rozhodlo, že chřest ošetřený EBDC nepřijme, přestože EPA povolila jeho použití po přezkoumání. To znamenalo, že mnoha pěstitelům nebyl ponechán žádný registrovaný fungicid k použití na chřestu. Od roku 1990 udělila EPA výjimky pro použití tebukonazolu, myklobutanilu a triadimefonu na chřest.

Banány

Havaj je primární stát v USA, kde banány jsou pěstovány. Průměrný výnos je 15 000 liber / akr. Na akr se pěstuje přibližně 600-800 rostlin. Výsadba probíhá celoročně. Trsy banánů jsou připraveny ke sklizni 12 až 15 měsíců po počáteční výsadbě.[39] Na banánové plantáži lze rostliny pozorovat ve všech fázích vegetativního růstu a zralosti plodů po celý rok. Banány lze sklízet každý den v roce.

Černá sigatoka

Jako žlutá sigatoka, černá sigatoka, byl poprvé dokumentován v údolí Sigatoka v Fidži. Poprvé byl zaznamenán v roce 1964 a jeho virulentnější tendenci vytlačovat žlutou sigatoku v plodinách banánů. Proto se žlutá sigatoka zřídka vyskytuje v místech, kde se vyskytuje černá sigatoka.[40] Infekce černé sigatoky se objevuje na listech plodin během rozvinutí. Spory sigatoka se inkubují na listech po dobu až šesti dnů, než do listu proniknou.[40] Poté bude infekce pokračovat v kolonizaci po dobu jednoho týdne, než rostlina projeví příznaky. Počáteční příznaky jsou malé skvrny na spodní straně listů. Objevují se 10–15 dní po infekci a rostou, dokud na listech nevypadají jako černé pruhy. To dává černé sigatokě alternativní název pruhu černých listů.[40] Tyto pruhy mohou vyschnout a zhroutit se za méně než jeden den. To ovlivňuje růst a výnos banánů snížením celkové fotosyntetické plochy listu.[41] Největší účinek na výnosy však mají toxiny produkované černou sigatokou, které způsobují předčasné zrání banánů. Tyto předčasně zralé plody nelze prodat a musí být zlikvidovány.

Za normálních podmínek na Havaji se odhaduje, že bez kontroly nad černou sigatokou by ztráty výnosu byly 30%.[11] Sigatoka je kontrolován kombinací ochranných a systémových fungicidů, aby se zabránilo rozvoji rezistence. Mancozeb se aplikuje jako primární ochranný prostředek a fenbukonazol, tebukonazol a azoxystrobin se aplikují jako systémové fungicidy.[41] Tyto fungicidy se aplikují v létě.[11]

Žlutá sigatoka

Žlutá sigatoka odvozuje svůj název od údolí Sigatoka na Fidži. To bylo místo, kde byla nemoc poprvé dokumentována v roce 1912. V průběhu první poloviny 20. století se nemoc rozšířila do všech hlavních zemí světa produkujících banány. Poprvé to bylo vidět v Trinidadu v roce 1934 a rychle se rozšířilo na pevninu a nahoru přes Střední Ameriku.[42] Nemoc se může šířit spory přes 1000 mil pomocí větrných proudů. V roce 1936 byly vyvinuty experimenty se směsí Bordeaux pro kontrolu nemoci. Nemoc byla poprvé objevena na Havaji v roce 1958.

Ječmen

Hlavní ječmen produkující státy Spojených států jsou Idaho, Minnesota, Montana, a Severní Dakota. Tyto státy tvoří 70% produkce ječmene v Americe. Tento ječmen se používá hlavně při sladování a vaření piva. Také se v některých oblastech používá jako krmné zrno.

Ječmen strup

Záchvaty ječmene strupové (také známé jako plíseň fusarium) se obvykle vyskytují, když jsou během období květu vývoje ječmene vysoké vlhkostní podmínky. Infikované plodiny jsou vybledlé, zmenšené a zbarvené a na hlavách ječmene narostou růžové spórové hmoty. Nemoc má potenciál zničit úrodu během několika týdnů.[43] Zmenšená jádra mohou být tak lehká, že je vítr může odfouknout od zbytku plodiny. Ječmenová strup navíc produkuje toxiny, které výrazně snižují hodnotu sklizeného ječmene. Tento toxin, deoxynivalenol, také známý jako vomitoxin protože má tendenci vyvolávat zvracení na vysokých úrovních, projde procesem vaření do piva. Když je pivo otevřeno, toxin způsobí přetékání kapaliny z láhve nebo plechovky. Protože to není komerčně žádoucí, dostávají producenti ječmene přísné cenové slevy, pokud je přítomen vomitoxin.[44]

V současné době je kontrola chrastavitosti ječmene považována za vysokou prioritu, což má za následek americkou iniciativu National Wheat and Barley Scab Initiative. Jen v roce 2005 experti státu Severní Dakota odhadli, že chrastavost stála hospodářství farmy v Severní Dakotě 162 milionů dolarů a v roce 1993 stála Severní Dakotu, Jižní Dakotu a Minnesotu 1 miliardu dolarů. Fungicidní pokusy v roce 2004 byly slibné. Výsledky prokázaly, že použití fungicidů snížilo strup o 77–85%, snížilo hladinu vomitoxinu o 49–69% a zvýšilo výnosy o 10–14%.

Stripe rez

Stripe rez je nedávná houba, která dorazila do Severní a Jižní Ameriky. Toto onemocnění bylo poprvé pozorováno v Kolumbii v roce 1975 a předpokládá se, že bylo přeneseno z Evropy.[44] V USA byl poprvé objeven v Texas v roce 1991 a v polovině 90. let ji bylo možné nalézt u plodin ječmene v západních státech. Stripe rez je nyní zaveden v Kalifornii, Idaho, Oregon a Washington a všechny ostatní oblasti ječmene Pacifický Severozápad jsou považovány za vysoce náchylné.[45] V letech 1996 až 1998 byly v Oregonu hlášeny ztráty na výnosech 25–50% a v Kalifornii bylo zaznamenáno 15 až 30%.[46][47] Stát Idaho odhaduje, že bez použití fungicidů by ztráty výtěžku byly 40%, na rozdíl od 5% při aplikaci fungicidů.[45]

Borůvky

Borůvky jsou náchylní k řadě houbových chorob. Ukázalo se, že USDA snižují výnosy o 25–60%, pokud nebudou kontrolovány.[15]

Alternaria listová skvrna

Listová skvrna byla poprvé identifikována v Severní Karolina na začátku sedmdesátých let, kdy bylo zjištěno, že způsobuje rozsáhlý rozpad plodů borůvek.[48][49] Toto onemocnění je obzvláště škodlivé pro pěstitele, protože příznaky onemocnění se projeví až v květnu, přibližně měsíc před červnovou sklizní. Když ovoce dozrává, je pokryto nazelenalým růstem hub a může prosakovat.[49] Protože se houba vyvíjí pozdě v době sklizně, lze ji účinně potlačovat aplikací fungicidů v časném květu a poté každé dva týdny až do sklizně.[49]

Plíseň Botrytis

Plíseň Botrytis je houba šedá plíseň, která byla poprvé pozorována na borůvkách v New Jersey v roce 1924 a v padesátých letech byla považována za nejnebezpečnější nemoc severozápadu.[49] USDA odhaduje, že 95% severozápadních plodin borůvek a 40% východních borůvkových polí je infikováno plísní botrytis. Ztráty na výnosech v těchto polích s nekontrolovanou plísní se odhadují na 30–40%.[11][15] Infekce v květu rostliny vede ve většině případů k úmrtnosti vaječníků, která znemožňuje vývoj samotného borůvky.[49]

Fusicoccum rakovina

Rakovina Fusicoccum je onemocnění borůvek, které je většinou omezeno na producenty borůvek z Michiganu. Poprvé byl objeven v šedesátých letech minulého století a byl každoročním problémem spodní části poloostrova.[50][51] Bylo prokázáno, že pokud je onemocnění nekontrolované, snižuje výnosy o 30%.[15] Fusicoccum canker je primárně řízen pomocí captan. Výzkum ukázal, že pravidelné aplikace mohou snížit infekční nádory o 82–95%.[49][51]

Mummyberry

Tato houbová infekce zasáhne borůvkovou rostlinu brzy na jaře. Přes zimu se infekce mummyberry inkubuje v mumifikovaném borůvkovém plodu, který spadl na zem, a na jaře začnou růst šálkovité struktury houby. Tyto struktury pak budou vyhazovat spory po dobu devíti dnů v průměru šedesát tisíc spor denně.[52] Tyto spory jsou přenášeny větrem na větvičky a květiny vyvíjejících se borůvek. Houba poté infikuje mladé listy a květy. Toto je fáze infekce 1. Sekundární fáze infekce nastává, když na infikovaných listech a květu rostou konidie, tyto konidie uvolňují spory, které ve skutečnosti „oplodní“ zdravé borůvkové květy a způsobí, že rostlině vyroste hustá houba sclerotium, která houbě pomůže přežít zimu .[53] Tyto bobule pak spadnou na zem, kde slouží jako hostitelé infekce mummberry v příštím roce. Pokud by infekce nebyla nekontrolovaná, odhaduje USDA, že výnosy borůvek klesnou v průměru o 20 až 50%.[11][15] bez kontroly stát Maine odhadoval, že jejich výnosy poklesnou o 25% a Michigan uvedl, že přijdou o 25–57% úrody.[54][55] Experimenty s fungicidními aplikacemi snížily výskyt mummyberry při sklizni z 21–24% na 0,4% a zvýšily výnos až o 34%.[56][57][58]

Hniloba kořenů Phytophthora

Phytophthora kořenová hniloba byla poprvé zaznamenána u rostliny borůvek v roce 1963. U rostlin zkoumaných v Severní Karolíně bylo zjištěno, že bylo infikováno 40% rostlin.[49] Mezi příznaky hniloby kořenů patří zažloutnutí nebo zčervenání listů, silné odlistění a zakrnělý růst rostlin.[59] Podle současných odhadů USDA je 80% akrů východní borůvky napadeno kořenovou hnilobou a má potenciál snížit výnosy až o 25%.[15]

Plíseň Pseudomonas

Plíseň Pseudomonas je bakteriální onemocnění, které napadá borůvkovou rostlinu na začátku sezóny, kdy je tkáň poškozena mrazem. Bakterie napadají tkáň rostliny a šíří se po celé rostlině, dokud zůstane chladná a vlhká. Jak se infekce šíří, na povrchu tkáně se objevují tenké prameny slizu.[60] Když teploty vzrostou, nemoc ustoupí až do pádu, když jí to umožní chladnější počasí. Měď se primárně používá k regulaci populace bakterií.

Zralá hniloba

Zralá hniloba, běžnější název pro antraknóza, je onemocnění lokalizované většinou v severních a jižních oblastech pěstování borůvek. Šíří se však na východ a nyní se odhaduje, že infikuje 30% regionů pěstování borůvek na východě.[15] Stejně jako listová skvrna, příznaky zralé hniloby se objevují, jak borůvka začíná zrát a zrát.[49] Jakmile borůvka dozraje, změkne a oranžové výtrusy budou vylučovány. Toto onemocnění může být obzvláště nákladné, protože pokud je do nádoby s nešpiněnými bobulemi vloženo nemocné bobule bez příznaků, může velmi rychle infikovat celou nádobu. Kontroly tohoto onemocnění se dosahuje fungicidními aplikacemi každé 1–2 týdny.[49]

Skvrnitost listů Septoria

Skvrnitost listů Septoria infikuje borůvkovou rostlinu spórami vyvrženými z infikovaných listů a lézemi stonků, které zůstaly na zemi z předchozí sklizňové sezóny. Tyto spory infikují plodinu a počátkem května se na rostlině a stonku vytvoří malé bílé / pálené listové léze. Tyto léze se nadále vyvíjejí a množí se do září.[61] Těžká infekce způsobuje odlistění rostliny. Tím se sníží výnos ovoce, protože se sníží přísun živin. U slabších infekcí, kde nedochází k defoliaci, sníží úbytek fotosyntetické plochy také výnosy.[61] Ukázalo se, že použití fenbukonazolu je úspěšné při kontrole listové skvrny. Pokud se použije při sklizni, pomůže to zabránit tvorbě listových skvrn v příštím roce. Bylo prokázáno, že v průměru o 45% vyšší výnosy v příští sklizni.[62]

Zelí

Alternaria listová skvrna

Místo listu Alternaria ovlivňuje zelí rostlinu tím, že způsobí silné špinění a změnu barvy na hlavě rostliny. Je to jen povrchní účinek na rostlinu, ale kvůli černé barvě listových skvrn je prodejnost silně infikované plodiny zelí nízká.[63] Bez kontrolní listové skvrny se odhaduje, že dokáže snížit výnosy až o 50%.[64] Alternativní listová skvrna je kontrolována pomocí stejného ošetření jako plíseň: aplikace azoxystrobinu, mědi, chlorthalonilu, mancozebu a začátku sezóny mezi maneby.

Černá hniloba

Díky své schopnosti rychle se šířit a ničit celá pole plodin lze černou hnilobu považovat za nejzávažnější chorobu zelí. Za správných podmínek má jedna rostlina schopnost šířit nákazu na celé pole a způsobit 100% ztrátu výnosu.[64] Nemoc se daří v oblastech se silnými dešti a vyššími teplotami.[63] Bakterie napadají rostlinu vodou, kterou rostlina absorbuje, a jakmile se uvnitř rozšíří, rychle se šíří. Získává své jméno, protože zčerná a ucpává žíly rostliny, což znemožňuje udržení pohybu živin rostlinou.[65] Měď je primární léčba kontroly černé hniloby.

Clubroot

Clubroot dostává svůj název od svého primárního příznaku: zvětšení kořenů rostlin. Abnormálně velké kořeny nejsou schopny správně absorbovat vodu a živiny ze země a výsledkem je zelí, které je podměrečné, zvadlé a zbarvené.[63] Pokud zůstanou nekontrolované ztráty na výnosu způsobené kořenem kořene, mohou dosahovat až 50%.[65] Jediným fungicidem, který se ukázal jako účinný při léčbě kořene kořene, je PCNB.[63]

Plíseň

Plíseň ponechán nekontrolovaný má schopnost snížit výnosy až o 55% a zamořit až 80% rostlin.[64] Plíseň je primárně kontrolována použitím několika fungicidů aplikovaných během sezóny. Mezi použité fungicidy patří azoxystrobin, měď, chlorthalolon, mancozeb a maneb. Bylo prokázáno, že zemědělci na Floridě, kteří pravidelně používají fungicidy, snižují ztráty na výnosech z plísní až na 2%.[66]

Mrkve

Bakteriální plíseň

Ukázalo se, že nekontrolovaná bakteriální plíseň způsobuje ztráty výtěžku až 20%.[67] Mezi příznaky patří malé, suché a křehké žlutohnědé skvrny na rostlině a stopky pokryté bakteriálním slizem.[68] Primární léčba bakteriální plísně je aplikace mědi před úplným zráním plodiny.[68]

Dutý bod

Dutinová skvrna se liší od ostatních nemocí mrkev v tom jsou příznaky viditelné pouze na kořenech rostliny, a proto není možné zjistit, zda je rostlina infikována z nad zemí. Primárním příznakem skvrny v dutině jsou malé půlpalcové léze na kořenech rostliny. Toto onemocnění je léčeno metalaxyl což umožňuje téměř úplnou kontrolu nad nemocí. Bez metalaxylových studií bylo zjištěno, že bude infikováno 50–60% plodin mrkve; po aplikaci metalaxylu je výskyt pod 1%.[69]

Padlí

Padlí je jednou z novějších chorob mrkve. Poprvé byl objeven v roce 1975 ve Spojených státech v teplejším podnebí Kalifornie a Texasu. Plíseň pokryje mrkev filmem růstu bílých hub, který rostlinu nezabije, ale zpomalí růst mrkve.[70][71] Tyto slabší rostliny je téměř nemožné mechanicky sklízet.

Spolupracovníci

Existují tři hlavní nemoci blázni: Alternaria, plíseň a černá hniloba. Příznaky Alternaria jsou malé hnědé léze na povrchu listového kola. Plíseň vytváří na listu malé žluté plísňové skvrny, které způsobují, že rostlina chřadne a umírá. A konečně, černá hniloba dostává své jméno, protože jejím primárním příznakem je, že bakterie infikují žíly rostliny a změní je na černou. Navíc je pro černou hnilobu často charakteristická léze ve tvaru písmene V přicházející z vnějšku listu. Tyto černé žíly se nakonec zhroutí a rostlina zemře.[72] Všechny tři tyto nemoci jsou kontrolovány měděnými spreji.

Bavlna

Pythium a Rhizoctonia

Pythium a Rhizoctonia jsou oběma chorobami sazenic bavlna rostlina. Mohou být pro rostliny bavlníku zničující, protože se vyvíjejí, když sazenice nejsou schopny překonat škody způsobené napadající houbou. Nemoci často zabíjejí semena dříve, než vyrostou. Pokud se však semenům podaří vypěstovat, projeví příznaky téměř okamžitě. Stonky bavlníkové rostliny budou slabé, na stonku se objeví hnědé potopené léze a rostlina často vyprodukuje nebo bude mít velmi špatné výnosy.[73] Pěstitelé, kteří pěstují brzy, jsou obzvláště náchylní, protože nižší teploty a vlhčí počasí jsou příznivé pro tyto nemoci. Proto se pěstitelům, kteří pěstují brzy, doporučuje používat ke kontrole fungicidy v brázdě: PNCB a iprodione pro Rhizoctonia a etridiazol a mefenoxam pro pythium.[74] Nedávno, azoxystrobin has proven effective in controlling both rhizoctonia and pythium.

Rez

Rust primarily attacks plants in Arizona, Nové Mexiko a Texas.[75] The disease attacks during the summer months and causes yellow or orange spots to grow on the leaves of the cotton plant. These spots can cause defoliation, premature openings, broken stems, and reduced yield.[76] Crops with severe outbreaks have been known to incur losses of up to 50%.[75] This disease is controlled with applications of mancozeb.

Česnek

Rez

Early symptoms of česnek rust are small yellow spots on the leaves that soon expand until the leaf tissue shatters and visible pustules emerge. Diseased bulbs lose their protective dry outer skin, preventing photosynthesis and leaving the garlic prone to shattering when mechanically harvested. In trials tebconazole and azoxystrobin have been shown to provide 50% higher yields in treated crops.[77]

Hrozny

Noble rot on grapes

Černá hniloba

Black rot is a disease estimated to affect 95% of all eastern hroznový vinice. The USDA estimates it could reduce yields by 85% if left untreated.[15] Black rot is spread through spores left in the mummied grapes infected the year before. Upon infection the grapes shrivel up and turn black.[78] These grapes do not fall from the vine but stay attached, and over winter spores grow within the infected grape. When summer comes the rain re-moistens the dried grape and causes it to swell. Spores discharge from the swollen grape into the air and infect the healthy crop.[79] Prior to fungicide development for black rot, in conditions favorable to the disease losses of 70 to 100 percent of the crop were common.[79] Today however applications of fungicides have been able to give almost complete control of the disease. In many vineyards infections can be reduced from 95% down to 1%.[80]

Botrytis banda rot

Cold and wet climates favor this disease, which is why it is often found in the coastal vineyards of California and New York.[81] In the eastern vineyards this disease is estimated to infect 30% of grapes while in California it can infect up to half.[82] This can reduce yields by 40–60%.[15][83] Much like black rot, bunch rot overwinters in the berries and infects the next season's crop through spore ejections in the summer.[84] Původně Bordeauxská směs was used to controlled botrytis bunch rot but the use of synthetic chemicals is now the preferred method.[85]

Phomopsis cane and leaf spot

Cane and leaf spot is a disease found on large areas of the East coast but rarely in California. The USDA estimates it affects 75% of the acres of eastern vineyards, with the potential to reduce yields up to 15%.[15] The disease can result in lesions, defoliation, and berry rot. However the same fungicide sprays used to control black rot done early in the season have been shown to control cane and leaf spot.

Padlí

Padlí was first reported in European grape vineyards in the mid-1850s. It could reduce yields by up to 80%. v Francie alone it reduced víno production from a billion gallons to only two hundred million gallons.[86] It was as a result of this disease's rapid spread throughout the continent that the first fungicide, síra, byl objeven.[87] The success of sulfur was so great that the grape industry was sparked in California when it was seen that disease could now be controlled and grapes were easy to grow. Uncontrolled powdery mildew rots the grapes from the inside out. Powdery mildew slows the growth of the grape skin so that the inside pulp grows at a faster rate and bursts through. These split grapes dry up and rot.[88] The grapes that do not split open are of much lower quality than normal grapes. Their acidity is much higher and as a result the wines taste bitter and off to most wine drinkers.[89] In order to control powdery mildew the same treatment that was recommended in the late 19th century is still used today: regular applications of sulfur every 1–2 weeks.[90]

Zelené fazole

Alternaria

Alternaria was first reported on zelené fazole in Florida in 1951 after a hundred acres were lost to the disease in one season.[91] By the 1970s it had spread up the coast to New York.[92] The disease causes lesions on the skin of the green bean, killing the tissue and giving the plant a moldy appearance.[93] Trials have shown that applications of chlorothalonil can reduce alternaria by up to 85%.[92]

Bakteriální plíseň

Bacterial blight is endemic to green bean crops grown east of the skalnaté hory.[63] During ideal conditions (usually humid weather) the disease can inflict losses as high as 60%.[94] Symptoms include lesions resembling burn marks that gradually grow larger.[93] In some states incidence of the disease can be as high as 100%.[95] Trials have shown that properly timed copper sprays can reduce incidence by 90%.[96]

Kořenová hniloba

Kořenová hniloba is a common disease of Florida green beans and can reduce crop yields there by up to 75% if untreated.[95] It was not until the 1950s that an effective fungicide was found to control root rot. Trials in Florida in the 1950s showed that applications of PCNB were able to reduce incidence to 3%.[97] PCNB is still the primary treatment today.[98]

Padlí

Powdery mildew appears on the green bean plant as a powdery white mold on the surface of the green bean leaf. This can grow and cover the entire plant.[93] Yield losses occur because the damage makes the crop not commercially viable.[63] Powdery mildew can be controlled with applications of sulfur. The original trials in the 1930s showed that incidence could be reduced from 87% to 2%.[99]

Rez

Bean rust is a disease of the green bean that causes rust-colored pustules on the leaves. These pustules eventually rupture and eject thousands of spores into the air to be carried to other plants.[63] Each individual spore can produce a fresh pustule on a plant within a week; therefore untreated rust can rapidly reach epidemic levels.[63] When leaves become infected with rust they rapidly die causing defoliation. Research in the 1930s showed that sulfur was an effective treatment for rust and since then yield losses in treated fields have been reduced by 60%.[100]

White mold

Before effective fungicides were developed white mold caused significant hardship for green bean growers. White mold is considered a resilient disease. After infecting the plant white mold produces black structures called sklerotie that fall to the soil and can survive for over five years until the conditions are right for infection again.[101] Since white mold affects plants very late in the growing season farmers would often harvest early to avoid losing much of their crop. However this usually resulted in a 30% loss of crop. Research in the 1970s eventually discovered that fungicides applied every 20 days reduced white mold incidence to 0% in treated areas.[102]

Lískové oříšky

Eastern filbert blight

Eastern filbert blight is caused by the fungus Anisogramma anomala and is indigenous to the Northeast United States. The fungus causes a small canker on the Native American Hazelnut, Corylus americana. However, on the introduced and commercially important European Hazelnut, Corylus avellana, it causes a lethal disease.[103] The cankers caused by EFB slowly expand and kill the tree over the course of several years if diseased tree limbs are not removed in time.[104] Výzkum s chlorothalonil a tebuconazole in the 1990s showed that 4–5 applications of the fungicides on a two-week schedule when vegetative buds are breaking dormancy is ideal for control of EFB.[105] The state of Oregon has estimated that if left uncontrolled EFB could eliminate half of the state's hazelnuts within ten years.[106]

Pálivé papriky

New Mexico accounts for roughly 65% of all U.S. pálivá paprička Výroba.

Bakteriální skvrna

Bacterial spot is spread from plant to plant through water, wind, and plant contact. Once infected, the leaves of the plant are targeted by the disease. The disease causes severe spotting of the pepper and kills the leaves.[107] This is a twofold problem because the defoliation results in the pepper being discolored by sunscald. Research for bacterial spot treatment has shown that copper sprays have been able to increase marketable yields by 50% in treated fields.[108]

Padlí

Powdery mildew causes a white powdery growth to cover the leaves of the hot pepper plant. These leaves may drop prematurely and as with bacterial spot can then cause sunscald.[109] This disease has been known to cause yield losses as high as 50–60% in untreated fields.[110] The prime fungicide used to control powdery mildew is myclobutanil.

Listový salát

Bottom rot

Bottom rot symptoms consist largely of deep reddish-colored lesions on the leaves that slowly spread from leaf to leaf until the entire head is rotted.[63] Trials with vinclozolin have demonstrated effectiveness in controlling bottom rot. Research indicated that when treated, crop yields rise about 36%.[111]

Plíseň

Downy mildew is an extremely common disease of the listový salát rostlina. This is largely due to the disease's quick germination period—three hours—and the lettuce plant being susceptible at all growth stages. One study estimated that in untreated Florida fields 75% of lettuce was infected with downy mildew and considered unsalable.[112] Research with maneb has shown the ability to reduce the number of lesions per 10 plants from 187 to about one.[113] EBDC and fosetyl-Al have also been shown effective in Florida trials that reduced unmarketable heads to 2%.[112]

Lettuce drop

Lettuce drop is another resilient disease of the lettuce plant. It can be found in all lettuce-growing regions of the U.S. and is able to survive in the soil for up to a decade after infecting a field.[114] The fungus appears on the plant as a white mass on the leaf that slowly turns into a hard black growth. These growths release spores that infect the lettuce plant with pathogens that slowly move up the stalk, killing tissue as they travel.[63][114] Použití DCNA, iprodione, a vinclozolin about a month before harvest has been shown to significantly reduce lettuce drop in treated fields.[114] In treated California fields fungicides are able to reduce yield losses as low as 5%.[115]

Padlí

Powdery mildew attacks lettuce plants by robbing them of the nutrients within the leaf. The fungus appears as a white growth on the upper surface of the leaf where it uses small tubes to pull nutrients out of the plant.[63] This causes severe discoloration and eventual defoliation of the plant. Applications of sulfur are recommended as the primary way to control powdery mildew on lettuce.[114]

Cibule

Plíseň

Downy mildew is an extremely fast-developing disease in the cibule. Studies have observed up to 40% of a field being infected in less than three days.[116] The first symptoms of the disease are white and purple growths on the surface of the plant leaves. Eventually these leaves die. This in turn destroys the plant's photosynthetic abilities, stunting growth and sometimes killing the plant.[117] Untreated downy mildew can reduce yields by 65%.[118] Downy mildew is controlled with the same foliar fungicides as leaf blight: azoxystrobin, copper, mancozeb, maneb, and mefenoxam.

Botrytis leaf blight

Leaf blight occurs in areas with hot and humid weather. The spores land on onion leaves, penetrate the skin, and rapidly kill the leaf. This causes a severe reduction in bulb size, as high as 50%, and can happen in less than a week.[119] Applications of foliar fungicides can be used to control leaf blight. These include azoxystrobin, chlorotholonil copper, mancozeb, maneb, and mefenoxam.

Purple blotch

Symptoms of purple blotch are primarily small white lesions that grow larger as they turn purple and brown. From these lesions spores are produced that cause additional lesions and also spread to other plants. However to develop, the disease requires very wet conditions for an extended period of time.[118] Fungicide-treated fields have been found to have yields roughly 20–35% higher than untreated fields.[120]

Seed rot

Yield loss due to seed rot can be as high as 30% in heavily infected acres.[121] The disease infects the onion seed and will cause the onions roots to be gray and mushy. These roots and plants rapidly decay and decompose, killing the plant.[122] Mefenoxam is recommended as treatment for seed rot.

Smut

Smut is a tough disease of the onion because it can last for years in the soil as spores. When the onion crop is planted the spores germinate and enter the fresh seeds.[121] When the plant grows lesions form on the leaf and any bulbs that form will be covered in black spots. Most of the time infected seeds will die within 3–5 weeks of planting.[121] Mancozeb is recommended for treatment of smut.

Arašídy

Cylindrocladium black rot

This disease infects any part of the plant below ground, so it often targets the roots; pegs or pods that are below ground are also vulnerable. Infected parts turn black and die. Often the infection spreads and kills the entire root system, effectively killing the plant.[123] Originally the disease was localized to North Carolina and Virginie, but recently Florida and Gruzie have begun experiencing higher incidences of the rot.[124] Recent research has shown tebuconazole to significantly suppress the disease and increase yields by up to 1,500 pounds per acre.[125]

Leaf Spot, Early

(Cercospora arachidicola)

Spots first appear on the upper surface of lower leaves as faint brown to black pinpoint dots. As the dots enlarge to become brown to dark-brown circular spots, a yellow "halo" generally develops as a border around each spot. This disease is frequently seen as early as June 1 in both North Carolina and Virginia. Spots with an irregular shape can also develop on leaf petioles and plant stems. Defoliation and reduced yield at harvest can result if this disease is not controlled by fungicide sprays. Leaves that fall to the soil surface may trigger epidemics of certain soilborne diseases such as Southern stem rot.

Leaf Spot, Late

(Cercosporidium personatum

Like early leafspot, this disease can also cause defoliation, reduced yield, and increased incidence of certain soilborne diseases such as Southern stem rot. As the name implies, late leafspot is most prevalent during the later part of the growing season. Spots are generally darker in color than early leafspot and commonly show no yellow halo.

Rez

Arašíd rust is unique because it is not a native disease to the U.S. and has not been able to survive beyond a single season when introduced. Airborne spores are annually introduced from other peanut-producing nations.[123] Rust causes reduced peanut pod fill and can potentially defoliate the entire crop if the conditions are right.[126] Originally copper and sulfur were used to control rust, but they were only partially effective.[126] It was not until the development of chlorothalonil and tebuconazole that an effective treatment for peanut rust was found.[123]

Sclerotinia blight

Scletotinia blight was first discovered in Virginia in the early 1970s but soon spread to the peanut producing states of North Carolina, Oklahoma a Texas. By 1982 it was considered to be one of the more significant diseases of the peanut.[123] In the late 1990s it was estimated that 70% of Virginia peanut land was infected with sclertotinia blight. The disease attacks the plant by producing a white mold on the stems that slowly consumes the stem, causing pods to detach early and leaving them undersized. Pod loss can be as high as 50% in infected areas.[123] In Virginia a five-year experiment saw yield increase of 35% in fields treated with fluazinam.[127]

Hniloba stonku

Stem rot, also known as white mold or southern blight, can be found in just about any peanut producing area in the U.S.[123] The most notable symptom of this disease is the white cottony fungal growth that envelops the entire plant. This mold will appear midseason when the foliage has covered the row middles. This damages the pods and creates a rotted texture.[123] In the 1950s PCNB was found to be somewhat effective at preventing white mold; however it was only able to reduce incidence by 15%.[128] It was not until the 1990s when tebuconazole was introduced that a fungicide was able to provide effective disease control. Tebuconazole is able to reduce incidence of white mold by 80–90%.[129]

Web blotch

Web blotch is currently found in all major peanut growing states in the south. It can be a highly damaging disease. In ideal conditions web blotch can cause yield loss as high as 50%.[123] The first sign that a plant is infected with web blotch is small tan blotches on plant leaves. The leaf will become brittle and the plant will defoliate.[123] Chlorothalonil and tebuconazole are effective treatments for reducing web blotch incidence.[123]

Pekanové ořechy

Pecan scab

Pekanový ořech scab is the deadliest disease of the pecan. In the right conditions—high humidity and dampness—up to 100% crop reduction can occur if left uncontrolled.[130] As a result, fungicides are used on 85–90% of all pecan acreage in southeastern states annually. Fenbuconazole, propiconazole, and TPTH are the primary fungicides used in the southeast for scab control.[131] In the southwest however fungicides are rarely used because the dry growing conditions are not conducive to growth of pecan scab.

Pistácie

Panicle and shoot blight

In California, since its discovery, panicle and shoot blight have become major diseases of the pistácie oříznutí. The warm, wet weather in the California pistachio acreage has proven to be optimal for the disease. In 1998 alone total lost production was estimated to be around 20 million pounds. The only areas that have been found resilient to the disease are Kern County a části Údolí San Joaquin.[132] Symptoms include dark lesions and shoots from the buds that are stunted and black. Eventually the leaves on the shoots wither and die and the fruit clusters subsequently collapse.[132] Currently azoxystrobin and chlorothalonil are used for blight control.[132]

Maliny

Botrytis fruit rot

This disease infects plants from berries left mummified from last year's crop. When the flowers open, spores from these mummified berries are expelled and infect the plant. This disease can be very costly because no symptoms are exhibited by the plant until harvest time, and then symptoms appear very rapidly.[60] The infected berries quickly develop a layer of gray mold (gray mold is also an alternate name for botrytis fruit rot), begin to leak fluid, and release more spores to cause additional infections.[133] Since the disease is such a late and rapidly occurring disease preventative fungicidal sprays must be used for control. Recent research has demonstrated an 83% reduction of gray mold in treated harvests.[134]

Phythophthora root rot

If the conditions are right root rot can inflict yield losses up to 75% on a malina oříznutí.[135] Symptoms of the disease are destruction of root tissue and wilted primocanes and floricanes.[60] Metalaxyl and fosetyl-al applied once in the fall or early spring have been shown to provide effective control of the disease.[60]

Žlutá rez

The primary modes of dispersal of yellow rust are wind and the splashing of raindrops, making wet conditions ideal for its spread. This means the Pacific Northwest is very susceptible to yellow rust. The symptoms of yellow rust are typically yellow pustules of the leaves that cause the leaves to fall from the plant. The fruit will also often die before it ripens.[133] In favorable conditions entire fields can easily incur 100% yield loss.[136] Oregon has estimated that treating fields with fungicides can provide 98–100% control of yellow rust, whereas uncontrolled yellow rust could reduce yields up to 25%.[137]

Rýže

Plíseň pláště

Plíseň pláště způsobené houbou Rhizoctonia solani, is one of the deadlier diseases of rýže. Up to 50% of southern United States rice could be infected with sheath blight each year.[138] Unlike most infections it does not produce spores and instead must be spread from contact through plants, rainwater, or the soil. It is a resilient disease that can survive for years in the soil even when there is no rice crop present.[139] Symptoms include lesions on the sheath of the plant, which feed off the nutrients within the plant. These lesions give rise to brown fungus balls which, if the plant dies from nutrient starvation, fall to the ground. The following season, heavy rains may allow the balls to float to other plants, which they can then infect.[140] Primary yield loss is therefore attributable to plant death and lower yields from the surviving plants due to the nutrient loss. Yield losses can be as high as 42%.[141] Research data has demonstrated that one application of azocystrobin at panicle differentiation can control sheath blight for almost the entire season.[142]

Kernel smut

Kernel smut can be found throughout soils in the Mid-South where spores are able to survive up to two years without a crop being planted.[138] When a crop is planted the disease infects the rice kernels during early development and replaces the starch inside with black kernel smut spores. These spores swell the plant until the grain eventually cannot contain the spores and bursts, releasing spores into the air.[143] These spores either infect the current crop or land on the soil to infect the next year's crop. The disease harms the plant because when rice infected with kernel smut is harvested it often breaks during the milling process and is rendered useless.[144] Research in Arkansas has recently shown that yield losses is about 10% when rice is left untreated.[138] Propiconazole has been found to provide the best fungicidal control, offering 85–95% reduction in kernel smut.[145]

False smut

False smut damages the rice plant by infecting the ovaries of the rice kernel in its early development.[143] Once inside the disease takes over the ovary and replaces it with spores that burst, producing a large orange ball between the glumes. These galls not only are covered in spores that spread the disease but when harvested result in rice that must be cleaned before it can be sold.[138] Použití propikonazol can reduce false smut by as much as 75%.[146]

Sójové boby

Anthracnose

Anthracnose tends to develop late in the harvesting season, and is not a common soybean disease. It is caused by the fungus Colletotrichum truncatum. The fungus infects sója by attaching to the surface of the plant and penetrating the tissue wall. From here anthracnose is able to spread spores throughout the plant, killing branches, pods, and leaves.[147][148] Once the plant is infected the disease causes defoliation and reduced quality and quantity of soybean seeds.[147] Foliar fungicides applied after blooming control the disease.[148]

Frogeye leaf spot

Frogeye leaf spot can occur on all soybean crops but crops in warm and humid regions are most susceptible. The main symptom is circular, purple or red lesions on the foliage of the plant. As the number of lesions grows the leaves eventually wither and die.[147] The disease can spread rapidly and often infects all the leaves of the plant. Yields from infected crops can be reduced by 15%.[147] Fungicides applied at late flowering and the beginning of seed growth have been shown to protect against frogeye.[148]

Rhizoctonia aerial blight

Rhizoctonia aerial blight attacks the soybean crop by infecting the plant during the flowering phase. It infects the tissue and produces lesions that eventually defoliate and rot the plant.[147] Foliar fungicides have been shown to be effective at combating the disease.[148]

Pod and stem blight

Pod and stem blight attack soybean plants during very wet seasons. It is caused by a number of species of the fungal genera Diaporthe and Phomopsis. They cause small black fruiting bodies to form on plant stems and pods.[148] These fungi cause moldy, cracked, and shriveled seeds which in return produce low-quality oil and meal.[147] Foliar fungicides applied between mid-flowing and late pod provide the best fungicidal control.[148]

Soybean sudden death syndrome (SDS)

Soybean sudden death syndrome (SDS) is caused by numerous species of the fungus Fusarium. First symptoms show up after flowering, and include interveinal necrosis, with green veins. When the stem is split, the cortical tissue will be a tan to cream color. Eventually the plant will dry out and die. Planting resistant soybean cultivars and rotating out of infected fields will reduce disease. [149]

Špenát

Plíseň

Until the late 1950s the United States špenát industry was not considered highly viable. Cultivars were vulnerable to downy mildew, which caused sharp reductions in quality and in select cases complete crop loss.[150] Control by fungicide use was not practical. The spinach industry began to expand in 1947 when a strain of plant was introduced from Iran that was proven to be resistant to downy mildew. Therefore, it was not until the late 1970s that a new strain of the disease made downy mildew a problem for U.S. growers.[150][151] The disease manifests as small yellow spots that quickly grow and rot the leaves. On the underside of the leaf blue mold spores grow and are spread to the rest of the spinach crop by wind.[150] Epidemics occur quickly due to the fast-growing nature of the fungus. After the new strain was discovered and began to destroy spinach fields, testing began in the 1980s with fungicides to control the disease. Výzkum to ukázal metalaxyl was effective, reducing yield loss from 43% to 1% in treated fields.[152]

White rust

White rust was discovered in Texas in 1937 and primarily occurs in spinach crops found in eastern U.S. production areas.[153][154] It has not been reported outside of the U.S.[153] The main symptom of white rust is lesions on the leaf that grow and eventually release spores that cover and kill the entire leaf. Some cultivars of spinach have partial resistance to white rust but metalaxyl has been shown to be the best way to control the disease. It reduces yield loss from 50% in untreated plots to 1% in treated plots.[155]

Cukrové řepy

Padlí

Padlí na cukrové řepy can be found wherever the crop is grown in the U.S.[156] It infects plants in the spring when the weather begins to get warm again. The spores land on the leaves and rapidly grow, forming a white mildew film on the foliage within a week of infection. This mildew penetrates the cell wall and begins to absorb nutrients from the leaves. This eventually turns the leaves yellow and kills them. If it proceeds uncontrolled the infection will spread through an entire field within a month.[157] Tests have shown that when left untreated powdery mildew can reduce yields by 27%.[158] Control is best achieved through the use of sulfur, which has been found to increase yields by 38%.[159]

Místo listu Cercospora

Cercospora leaf spot infects sugarbeets by overwintering in the soil from the year's previous crop. It can survive up to two years without a sugarbeet crop being planted. Once attached to the plant the fungus penetrates the tissue and begins to infect and kill nearby tissue.[160] As the disease progresses these individual rotted spots begin to come together to form massive areas of dead tissue. This causes severely infected leaves to eventually die. The plant responds by attempting to re-grow the leaf and using nutrients within the plant.[161] This results in lowered sugar content and stunted growth. Losses due to the disease can be as high as 42%.[162] Tetraconazole has been shown to provide the best control. Research demonstrated that treatments with tetraconazole increased the amount of sucrose extracted by 30%.[163]

Sladká kukuřice

Corn mold

Northern corn leaf blight

As there are many strains, northern corn leaf blight (NCLB) is considered one of the most serious and hard to control diseases of sweet corn.[164] Its multiple strains mean it is nearly impossible to attempt any control of NCLB with plant resistance.[164] The symptoms of the disease include long, thin dead areas on the leaf that slowly grow and coalesce.[63] These lesions produce spores that can infect other plants. However much of the spread and severity of the disease is dependent upon weather conditions. Heavy rains, low temperatures, and relatively high humidity increase the number of life cycles of the fungus, producing additional spores.[63] The most common control practice for NCLB is chlorothalonil, maneb, and mancozeb.[63]

Plíseň jižní kukuřice

Southern corn leaf blight thrives in the southern United States because unlike NCLB it requires warm weather to develop. During favorable conditions the disease has been documented ruining a whole crop within days when left untreated.[63] Treatment is available with the use of chlorothalonil, mancozeb, and maneb but even this is limited. In one study in Florida even when a regular fungicide plan was followed over 25% of the ears were lost.[63]

Rez

Yield losses due to rust in corn can range from 20% to 50% of the crop depending upon when the infection strikes. If the disease attacks the corn early this will result in stunted growth of the ears and dried out kernels.[165] However, this results in the lower end of crop yield loss. The greater damage comes when the infection appears later in the season because, although yield remains the same, extensive cosmetic damage to the corn—pustules cover the leaves, husks, necks, and tassels of the plant—renders much of it becomes unmarketable. This can result in up to 50% loss of yield.[165]

Viz také

Reference

  1. ^ Teviotdale, B.L.; et al. (Květen 2001). "First Report of Alternaria Leaf Spot of Almond Caused by Species in the Alternaria alternata Complex in California". Nemoc rostlin. 85 (5): 558. doi:10.1094/pdis.2001.85.5.558b. PMID  30823137.
  2. ^ Specific Section 18 Emergency Exemption Request to use Azoxystrobin (Abound Flowable) to Control Alternaria on Almonds in San Joaquin Valley of California, California Department of Pesticide Regulation, 1999.
  3. ^ A b C Teviotdale, Beth L., et al., eds., Compendium of Nut Crop Diseases in Temperate Zones, APS Press, 2002
  4. ^ Anthracnose called ‘Ugliest Orchard Disease’ by Farm Advisor, Ag Alert, August 14, 1996
  5. ^ Specific Exemption for Use of Propiconazole (Break EC) for Control of Anthracnose on Almonds in California, California Department of Pesticide Regulation, Section 18 Emergency Exemption Request, November, 1997.
  6. ^ A b C d E F G h "Crop Profile for Almonds in California". USDA. Leden 1999. Archivovány od originál dne 17. dubna 2007. Citováno 7. května 2009.
  7. ^ "Blossoms: Radioactive Fungicides on Trail of Almond Brown Rot". Ag Alert. February 14, 1990.
  8. ^ A b C d Integrated Pest Management for Almonds, University of California, Statewide Integrated Pest Management Project, Publication 3308, 1985.
  9. ^ A b C d E F G Years of Discovery: A Compendium of Research Projects 1972-1998, Almond Board of California, 1999.
  10. ^ A b C Ogawa, Joseph; E.E. Wilson; Harley English (February 1959). "The Leaf Blight Disease of Almond and its Control". Hilgardie. 28 (10).
  11. ^ A b C d E F G Gubler, W. Douglas, Fungicide Benefits Assessment Fruit and Nut Crops - West, USDA National Agricultural Pesticide Impact Assessment Program, January, 1991.
  12. ^ Teviotdale, Beth; et al. (May–June 1989). "Effect of Fungicides on Shot Hole Disease of Almonds". Kalifornie zemědělství. 43 (3).
  13. ^ Keitt, G.W., "Scab of Apples," Yearbook of Agriculture 1953, United States Department of Agriculture, p. 646, 1954.
  14. ^ A b C d E F G h Jones A.L., and H.S. Aldwinckle, eds., Compendium of Apple and Pear Diseases, APS Press, 1990.
  15. ^ A b C d E F G h i j k l m Hickey, Kenneth D., Fungicide Benefits Assessment Fruit and Nut Crops - East, USDA National Agricultural Pesticide Impact Assessment Program, January, 1991.
  16. ^ Yoder, K.S.; K.D. Hickey (December 1981). "Sterol-Inhibiting Fungicides for Control of Certain Diseases of Apple in the Cumberland-Shenandoah Region". Nemoc rostlin. 65 (12): 998. doi:10.1094/PD-65-998.
  17. ^ Latham, A.J.; J.C. Williams (October 1983). "Cultural Characteristics and Pathogenicity of Glomerella cingulata Isolates from Apples in Alabama". Nemoc rostlin. 67 (10): 1065. doi:10.1094/PD-67-1065.
  18. ^ A b Hurt, R.H., and F.J. Schneiderhan, New Methods of Bitter Rot Control, Virginia Agricultural Experiment Station, Bulletin No. 254, February, 1927.
  19. ^ A b Dunegan, John C., "Bitter Rot of Apples," Yearbook of Agriculture 1953, United States Department of Agriculture, p. 655, 1954.
  20. ^ Palmiter, D.H. (October 1951). "A Blossom End Rot Outbreak in Hudson Valley Orchards". Farm Research: 15.
  21. ^ Yoder, K.S. (1986). "Fungicide Control of Brooks Fruit Spot of Apple". Nemoc rostlin. 66 (1): 564. doi:10.1094/PD-66-564.
  22. ^ Steward, P. (May 5, 2000). "Washington Growers Monitor Orchards for Fire Blight". Capitol Press.
  23. ^ Moller, W.J.; et al. (Červenec 1981). "The Scenario of Fire Blight and Streptomycin Resistance". Nemoc rostlin. 65 (7): 563. doi:10.1094/PD-65-563.
  24. ^ Yoder, K.S.; K.D. Hickey (February 1983). "Control of Apple Powdery Mildew in the Mid-Atlantic Region". Nemoc rostlin. 67 (2): 245. doi:10.1094/PD-67-245.
  25. ^ Palmiter, D.H., Rust Diseases of Apples and Their Control in the Hudson Valley, New York State Agricultural Experiment Station, Bulletin No. 756, November, 1952.
  26. ^ Sutton, T.B. (1981). "Production and Dispersal of Ascospores and Conidia by Physalospora obtusa a Botryosphaeria dothidea in Apple Orchards". Fytopatologie. 71 (6): 584. doi:10.1094/Phyto-71-584.
  27. ^ A b Specific Exemption for Use of Myclobutanil for Control of Powdery Mildew on Artichoke in California, California Environmental Protection Agency, Section 18 Emergency Exemption Request, May 27, 1998.
  28. ^ "Artichoke Powdery Mildew". UC Pest Management Guidelines. 01/02. Citováno 2009-05-18. Zkontrolujte hodnoty data v: | datum = (Pomoc)
  29. ^ Falloon, Peter, G.; et al. (Listopad 1985). "Control of Phytophthora rot with Metalaxyl in Established Asparagus". Nemoc rostlin. 69 (11): 921–923. doi:10.1094/PD-69-921.
  30. ^ A b Falloon, Peter G.; et al. (January 1986). "Effect of phytophthora megasperma var. sojae on Yield of Asparagus officinalis". Nemoc rostlin. 70 (1): 15–19. doi:10.1094/PD-70-15.
  31. ^ A b Elmer, Wade H (May 2001). "Economically Important Diseases of Asparagus in the United States". Pokrok v oblasti zdraví rostlin.
  32. ^ Meyer, M.P.; M.K. Hausbeck; R. Podolsky (May 2000). "Optimal Fungicide Management of Purple Spot of Asparagus and Impact on Yield". Nemoc rostlin. 84 (5): 525–530. doi:10.1094/PDIS.2000.84.5.525. PMID  30841343.
  33. ^ Hausbeck, Mary (May 1999). "Controlling Purple Spot on Asparagus is an Investment in Future Yield". The Vegetable Growers News. str. 33.
  34. ^ A b Halsted, Byron D., The Asparagus Rust; Its Treatment and Natural Enemies, New Jersey Agricultural Experiment Station Bulletin 129, 1898.
  35. ^ Smith, Ralph E., Further Experience in Asparagus Rust Control, University of California, College of Agriculture, Agricultural Experiment Station Bulletin 172, 1906.
  36. ^ Kahn, Robert P., et al., An Investigation of Asparagus Rust in Illinois; Its Causal Agent and Its Control, University of Illinois, Agricultural Experiment Station Bulletin 559, 1952
  37. ^ Linn, M.B.; K.R. Lubani (May 15, 1958). "Zineb as a Protective Fungicide for the Control of Asparagus Rust". Reporter nemocí rostlin. 42 (5): 669–672.
  38. ^ Hausbeck, M.K.; J.J. Kusnier III. "Control of Disease of Asparagus with Foliar Sprays, 1991". Fungicide and Nematicide Tests. 47: 75.
  39. ^ "Pest Management Strategic Plant for Banana Production in Hawaii" (PDF). USDA. Březen 2003. Retrieved March 2003. Zkontrolujte hodnoty data v: | accessdate = (Pomoc)[trvalý mrtvý odkaz ]
  40. ^ A b C Ploetz, R.C. et al., ed., Compendium of Tropical Fruit Diseases, APS Press, 1998
  41. ^ A b Marin, Douglas H.; et al. (Březen 2003). "Black Sigatoka: An Increasing Threat to Banana Cultivation". Nemoc rostlin. 87 (3): 208–222. doi:10.1094 / PDIS.2003.87.3.208. PMID  30812750.
  42. ^ Trujillo, E.E.; et al. (1964). "The Distribution of Sigatoka Disease of Bananas in Hawaii". Hawaii Farm Science. 13: 10–12.
  43. ^ McMullen, Marcia; Roger Jones; Dale Gallenberg (December 1997). "Scab of Wheat and Barley: a Re-emerging Disease of Devastating Impact". Nemoc rostlin. 81 (12): 1340–1348. doi:10.1094/PDIS.1997.81.12.1340. PMID  30861784.
  44. ^ A b Mathre, D.E., ed., Compendium of Barley Diseases, 2nd Edition, APS Press, 1997
  45. ^ A b Specific Exemption for Use of Tebuconazole (Folicur 3.6F) for Control of Stripe Rust infesting Barley in Idaho, Oregon, and Washington, Idaho Department of Agriculture, Section 18 Emergency Exemption Request, January 16, 1998.
  46. ^ "Barley Growers fighting Strip Rust," Capital Press, July 18, 1997
  47. ^ "Heat, Strip Rust Damage Nw, California Barley Crop," Capital Press, September 18, 1998
  48. ^ Milholland, R.D. (1973). "A Leaf Spot disease of Highbush Blueberry caused by Alternaria Tenuissima". Fytopatologie. 63 (11): 1395–1397. doi:10.1094/Phyto-63-1395.
  49. ^ A b C d E F G h i Caruso, Frank L.; Donald C Ramsdell (1995). Compendium of Blueberry and Cranberry Diseases. APS Stiskněte. ISBN  978-0-89054-198-2.
  50. ^ Weingartner, D.P.; E.J. Klos (February 1975). "Etiology and Symptomatology of Canker and dieback Disease on Highbush Blueberries caused by Godronia (Fusicoccum) cassandrae and Disaporthe (phomopsis) vaccinii". Fytopatologie. 65 (2): 105–110. doi:10.1094/phyto-65-105.
  51. ^ A b Parker, P.E.; D.C. Ramsdell (1997). "Epidemiology and Chemical Control of Godronia Canker of Highbush Blueberry". Fytopatologie. 67 (12): 1475–1480. doi:10.1094/phyto-67-1475.
  52. ^ Lehman, Jeffrey S.; Peter Oudesmans (2000). "Variation and Heritability of Phenology in the fungus Monilinia vaccinii-corymbosi on Blueberry". Fytopatologie. 90 (4): 390–395. doi:10.1094/PHYTO.2000.90.4.390. PMID  18944589.
  53. ^ Stretch, A.W.; M.K. Ehlenfeldt; V. Brewster (June 1995). "Mummyberry Disease Blight Resistance in Highbush Blueberry Cultivars". HortScience. 30 (3): 589–591. doi:10.21273/HORTSCI.30.3.589.
  54. ^ Section 18, Specific Exemption, Petition for use of Propiconazole, Orbit Fungicide, EPA Reg. No. 100-702, on wild blueberry fields in Maine to control Mummy berry disease, Maine Department of Agriculture, Food, and Rural Resources, Section 18 Emergency Exemption Request, December 17, 1997.
  55. ^ Section 18, Specific Exemption, Petition for use of Fenbuconazole, Indar Fungicide, to control mummy berry disease of blueberries in Michigan in 1999, Michigan Department of Agriculture, Section 18 Emergency Exemption Request, January 28, 1999
  56. ^ Ramsdell, D.C.; J.W. Nelson; R.L. Myers (November 1975). "Aerial Applications of Systemic and Nonsystemic Fungicides for Control of Mummyberry Disease of Highbush Blueberries". Reporter nemocí rostlin. 59 (11): 873.
  57. ^ Lambert, D.H.; W.A. Wright; M.A. Frey (1988). "Evaluation of Fungicides for Control of Botrytis Blight on Lowbush Blueberry". Fungicide and Nematicide Tests. 43.
  58. ^ Bristow, P.R.; G.E. Windon (1996). "Field Evaluation of Fungicides for Control of the Mummyberry disease, 1995". Fungicide and Nematicide Tests. 51.
  59. ^ Royle, D.J.; C.J. Hickman (April 15, 1963). "Phytophthora Cinnamomi on highbush Blueberry". Reporter nemocí rostlin. 47 (4): 266.
  60. ^ A b C d Ellis, Michael A.; et al. (1991). Compendium of Raspberry and Blackberry Disease and Insects. APS Stiskněte. ISBN  978-0-89054-121-0.
  61. ^ A b Roloff, I.; H. Scherm; M.W. van Iersel (April 2004). "Photosynthesis of Blueberry Leaves as Affected by Septoria Leaf Spot and Abiotic Leaf Damage". Nemoc rostlin. 88 (4): 397–401. doi:10.1094/PDIS.2004.88.4.397. PMID  30812621.
  62. ^ Cline, W.O., "Blueberry Bud Set and Yield Following the Use of Fungicides for Leaf Spot Control in North Carolina," Proceedings of the 7th International Symposium of Vaccinium, Acta Horticulturae, Vol. 574, 2002
  63. ^ A b C d E F G h i j k l m n Ó p Sherf, Arden F.; Alan A. Macnab (1986). Vegetable Disease and Their Control. John Wiley & Sons.
  64. ^ A b C "Crop Profile for Cabbage in Texas". USDA. Květen 2003. Archivovány od originál 5. září 2009. Citováno 2. června 2009.
  65. ^ A b "Crop Profile for Cabbage in New York". USDA. Květen 1999. Archivovány od originál 6. září 2009. Citováno 2. června 2009.
  66. ^ "Crop Profile for Cabbage in Florida". USDA. Červen 2000. Archivovány od originál 5. září 2009. Citováno 2. června 2009.
  67. ^ "Crop Profile for Carrots in Texas". USDA. Květen 2003. Archivovány od originál 6. prosince 2006. Citováno 2. června 2009.
  68. ^ A b Davis, Michael R.; Richard N. Raid (2002). Compendium of Umbelliferous Crop Diseases. APS Stiskněte. ISBN  978-0-89054-287-3.
  69. ^ Farrar, James J.; J. Joseph Nunez; R. Michael Davis (March–April 2002). "Repeated Soil Applications of Fungicide Reduce Activity Against Cavity Spot in Carrots". Kalifornie zemědělství. 56 (2): 76–79. doi:10.3733/ca.v056n02p76.
  70. ^ Kontaxis, Demetrois G. (August 1976). "Powdery Mildew on Carrots-A New Disease". Kalifornie zemědělství. 30: 15.
  71. ^ "Crop Profile for Carrots in Michigan". USDA. Srpen 1999. Archivovány od originál 2. září 2006. Citováno 2. června 2009.
  72. ^ "Crop Profile for Leafy Greens in Georgia". USDA. Červenec 2001. Archivovány od originál 7. září 2006. Citováno 3. června 2009.
  73. ^ Minton, Earl B.; Richard H. Garber (January 1983). "Controlling the Seedling Disease Complex of Cotton". Nemoc rostlin. 67 (1): 115. doi:10.1094/PD-67-115.
  74. ^ "Applying a Fungicide May Prevent Cotton Replanting". Ag Alert. March 27, 2002.
  75. ^ A b Hine, Richard, and Jeffery C Silvertooth, Diseases and Production Problems of Cotton in Arizona, University of Arizona Cooperative Extension Service, No. 8927, March, 1990.
  76. ^ Kirkpatrick, T.L.; C.S. Rothrock (2001). Compendium of Cotton Disease. APS Stiskněte.
  77. ^ Koike, Steven T.; et al. (September–December 2001). "Rust Disease Continues to Threaten California Garlic Crop". Kalifornie zemědělství. 55 (5): 35–39. doi:10.3733/ca.v055n05p35.
  78. ^ Pearson, R.C., Black Rot Grape IPM Disease Identification Sheet No. 4, New York State Agricultural Experiment Station, 1984.
  79. ^ A b Ferrin, Donald M.; D.C. Ramsdell (1977). "Ascospore Dispersal and Infection of Grapes by Guignardia bidwellii, the casual Agent of Grape Black Rot Disease". Fytopatologie. 67 (12): 1501. doi:10.1094/phyto-67-1501.
  80. ^ Ellis, M.A.; L.V. Madden; L.L. Wilson (October 1986). "Electronic Grape Black Rot Predictor for Scheduling Fungicides with Curative Activity". Nemoc rostlin. 70 (10): 938. doi:10.1094/PD-70-938.
  81. ^ Pearson, R.C.; D.G.Riegel (1983). "Kontrola Botrytis Bunch Rot zralých hroznů: Časové aplikace dikarboximidových fungicidů". American Journal of Enology and Vinařství. 34 (3): 167.
  82. ^ McClellan, W.D .; et al. (1973). "Early Botrytis rot of Grapes and its Control". American Journal of Enology and Vinařství. 24 (1): 27.
  83. ^ „Botrytis je ve Winegrapes stále přítomnou hrozbou“. Ag Alert. 10. května 1995.
  84. ^ Pearson, Roger c. (Srpen 1979). „Botrytis Bunch Rot: Understanding The Disease, Strategies for Control“. Východní pěstitel hroznů a zprávy o vinařství. str. 18.
  85. ^ Braun, Alvin J. (1949). "Některé účinky sprejů Fermate a Bordeaux na hrozny Concorn Grapes". Fytopatologie. 39: 3.
  86. ^ Carefoot, G.L .; E. Sprott (1967). Hladomor ve větru: Bitva člověka proti nemoci rostlin. Rand McNally & Company.
  87. ^ Spencer, D.M. (1978). Padlí. New York: Academic Press. ISBN  978-0-12-656850-9.
  88. ^ Pearson, Roger C .; Austin C. Goheen (1988). Kompendium chorob z hroznů. APS Stiskněte. ISBN  978-0-89054-088-6.
  89. ^ Ough, C.S .; H.W. Berg (1979). "Poznámka k výzkumu: Senzorický účinek padlí na víno". American Journal of Enology and Vinařství. 10 (4): 321.
  90. ^ Bioletti, Frederic T., Oidium or Powdery Mildew of the Vine, University of California, Agricultural Experiment Station, Bulletin No. 186, February, 1907
  91. ^ Swank, George Jr. (15. července 1951). „Alternaria Leaf Spot and Dieback of Snap Bean: a New Disease in Central Florida“. Reporter nemocí rostlin. 35 (7): 330.
  92. ^ A b Abawi, GS; DC Crosier; A.C. Cobb (listopad 1977). "Pod-Flecking of Snap Beans Cause by Alternaria alternata". Reporter nemocí rostlin. 61 (1): 901.
  93. ^ A b C Hall, Robert (1991). Kompendium chorob fazole. APS Stiskněte. ISBN  978-0-89054-118-0.
  94. ^ Delahunt, Karen A .; Susan E. Riceová; Jeffery A. Wyman (1997). „Zpracování produkce fazolí: Biologické a ekonomické hodnocení ochrany proti škůdcům a používání pesticidů“. University of Wisconsin. Archivovány od originál 28. srpna 2006. Citováno 3. června 2009.
  95. ^ A b „Crop Profile for Beans (Snap) in Florida“. USDA. Březen 2003. Archivovány od originál dne 12. září 2006. Citováno 3. června 2009.
  96. ^ Oshima, N .; L.E. Dickens (červenec 1971). "Účinky měděných postřiků na sekundární šíření běžného bakteriálního světla fazolí". Reporter nemocí rostlin. 55 (7): 609.
  97. ^ Moore, W.D .; Robert A. Conover (15. února 1955). "Chemické úpravy půdy pro kontrolu Rhizoctonia na fazolích". Reporter nemocí rostlin. 39 (2): 103.
  98. ^ Crosson, D.F .; et al. (15. února 1963). „Kontrola hniloby kořenů Rhizoctonia u Snapbeanu: Fungicidní spreje s malým objemem v brázdě versus velký objem před výsadbou. Reporter nemocí rostlin. 47 (2): 109.
  99. ^ Moore, W.D. (1936). "Padlí (erysiphe polygoni) na fazolích zahradní". Fytopatologie. 26: 1135.
  100. ^ McMillan Jr., R.T .; G. Ellal; H.H. Bryan (1982). „Fungicidy pro hubení padlí a fazole rzi“. Sborník Florida State Horticultural Society. 95: 304–307.
  101. ^ Steadman, James R. (duben 1983). "Bílá plíseň - vážná výtěžek omezující nemoc fazole". Nemoc rostlin. 67 (4): 346. doi:10.1094 / PD-67-346.
  102. ^ Natti, J.J. (Červen 1971). "Epidemiologie a kontrola plísní bílé fazole". Fytopatologie. 61 (6): 669. doi:10.1094 / Phyto-61-669.
  103. ^ „Informační přehled o východním Filbertovi“. Diagnostická klinika pro choroby rostlin v Cornell University. Duben 2009. Citováno 14. prosince 2010.
  104. ^ Johnson, Kenneth B .; et al. (Prosinec 1996). „Východní lískový oříšek lískového oříšku: Stává se z něj zvládnutelná nemoc“. Nemoc rostlin. 80 (12): 1308–1316. doi:10.1094 / PD-80-1308.
  105. ^ Johnson, Kenneth B .; Jay W. Pscheidt; John N. Pinkerton (srpen 1993). „Vyhodnocení chlorthalonoilu, fenarimolu a flusilazolu pro kontrolu východního lískového ořechu“. Nemoc rostlin. 77 (8): 831–837. doi:10.1094 / PD-77-0831.
  106. ^ Specifická výjimka pro použití tebukonazolu (Elite 45 DF Foliar Fungicide) pro kontrolu Eastern Filbert Blight na lískových oříšcích v Oregonu, Oregonské ministerstvo zemědělství, Část 18 Žádost o mimořádnou výjimku, 20. prosince 1999
  107. ^ „Crop Profile for Peppers (Chile) in New Mexico“. USDA. Březen 2000. Archivovány od originál 6. září 2009. Citováno 3. června 2009.
  108. ^ Crossan, DF; et al. (15. dubna 1963). „Srovnání fixních sprejů na měď a dodin s různými přísadami pro kontrolu bakteriální skvrny pepřového ovoce“. Reporter nemocí rostlin. 47 (4): 239.
  109. ^ Pernezny, Ken; et al. (2003). Kompendium nemocí pepře. APS Stiskněte. ISBN  978-0-89054-300-9.
  110. ^ Smith, Richard f .; et al. (Listopad – prosinec 1999). „Několik fungicidů reguluje padlí v pepři“. Kalifornie zemědělství. 53 (6): 40–43. doi:10,3733 / ca.v053n06p40.
  111. ^ Riedel, R.M .; L. J. Herr; P.J.Dudash (1990). "Chemická a biologická kontrola spodní hniloby salátu". Testy na fungicidy a nematicidy. 45: 113.
  112. ^ A b Raid, R.N .; L.E. Datnoff (1989). "Účinnost aplikace fosetyl-AL na list při hubení plísní salátu". Sborník Florida State Horticultural Society. 102: 362.
  113. ^ Greathead, Arthur S. a kol., „Fungicidní kontrola plísní a antraknózy salátu“, Výzkumný program ledového salátu, 6. výroční zpráva, Kalifornská univerzita, 1980
  114. ^ A b C d Davis, Michael R .; et al. (1997). Kompendium chorob hlávkového salátu. ISBN  978-0-89054-186-9.
  115. ^ „Strategický plán ochrany proti škůdcům pro produkci salátu v Kalifornii a Arizoně“ (PDF). USDA. Únor 2003.
  116. ^ Onion Downy Mildew, University of California Cooperative Extension Service, březen 1995
  117. ^ Yarwood, C.E .; Cibule padlí (únor 1943). „Cibule padlí“. Hilgardie. 14 (11).
  118. ^ A b „Oříznout profil cibule v Texasu“. USDA. Červen 2003.[trvalý mrtvý odkaz ]
  119. ^ McLean, D.M .; Bailey Smith (1959). "Tip and Leaf Blight of Onions in the Lower Rio Grande Valley". Journal of the Rio Grande Valley Horticultural Society. 13.
  120. ^ „Crop Profile for Onions in Wisconsin“. USDA. Leden 1999.[trvalý mrtvý odkaz ]
  121. ^ A b C „Crop Profile for Onions in New York“. USDA. Květen 1999.[trvalý mrtvý odkaz ]
  122. ^ Schwartz, Howard F .; S. Krishna Mohan (1995). Kompendium chorob cibule a česneku. APS Stiskněte. ISBN  978-0-89054-170-8.
  123. ^ A b C d E F G h i j Kokalis-Burelle, N .; et al. (1997). Kompendium arašídových nemocí 2. vydání. APS Stiskněte.
  124. ^ Pattee, Harold E .; Clyde T Young (1982). Peanut Science and Technology. Americká společnost pro výzkum a vzdělávání arašídů.
  125. ^ Keller, Rich (srpen 2001). „Potlačení: Fungicidy zůstávají možností pro správu CBR v Gruzii“. Farmář arašídů: 26.
  126. ^ A b Subrahmanyam, P .; et al. (Září 1985). „Arašídová rez: hlavní hrozba pro produkci arašídů v tropech Semiarid“ (PDF). Nemoc rostlin. 69 (9): 813. doi:10.1094 / PD-69-813.
  127. ^ Phipps, Patrick M., Specifická výjimka pro použití fluazinamu (Omega 500) pro kontrolu Sclerotinia Blight on Peanuts ve Virginii, Polytechnický institut ve Virginii a Státní univerzita, Oddíl 18 Žádost o nouzovou výjimku, leden 2000
  128. ^ Hagan, A. K.; J.R. Weeks; J.A. McGuire (1988). „Srovnání půdních insekticidů samostatně a v kombinaci s PCNB pro potlačení hniloby arašídů jižního kmene“. Peanut Science. 15 (1): 35. doi:10.3146 / i0095-3679-15-1-10.
  129. ^ Hagan, A. K.; J.R. Weeks; K.L. Bowen (podzim 1992). "Nové fungicidy slibují lepší kontrolu bílé plísně na arašídech". Hlavní body zemědělského výzkumu.
  130. ^ Cole, John R. (1953). "Problémy s pěstováním pekanových ořechů". Ročenka zemědělství. USDA.
  131. ^ Large, John R., „Výsledky dvouletého postřiku přípravkem DuTer (Tri Phenol Tin Hydroxide) ve srovnání s jinými fungicidy pro hubení pekanové strupy,“ Proceedings Southeast Pecan Growers Association, 1965
  132. ^ A b C Michailides, Themis J .; David P Morgan (leden 2004). „Panicle and Shoot Blight of Pistachio: a Major Threat to the California Pistachio Industry“ (PDF). APSnet.org. Archivovány od originál (PDF) dne 14. května 2009. Citováno 8. června 2009.
  133. ^ A b „Strategický plán ochrany proti škůdcům pro produkci třtiny ve Washingtonu a Oregonu“ (PDF). USDA. Červenec 2003. Archivovány od originál (PDF) 7. září 2006. Citováno 8. června 2009.
  134. ^ DeFrancesco, J .; G. Koskela. „Hodnocení fungicidů pro kontrolu hniloby plodů šedé formy u malin“. Testy na fungicidy a nematicidy. 58.
  135. ^ „Ořezový profil pro červené maliny ve Washingtonu“. USDA. Leden 1999. Archivovány od originál 7. září 2006. Citováno 8. června 2009.
  136. ^ Johnson, Folke (1953). „Nemoci bobulí na Západě“. Ročenka zemědělství. USDA.
  137. ^ Specifická výjimka pro použití propikonazolu (orbitového fungicidu) pro kontrolu žluté rzi na malinách v Oregonu, Oregonské ministerstvo zemědělství, část 18 Žádost o mimořádnou výjimku, 20. března 2000
  138. ^ A b C d „Strategický plán ochrany proti škůdcům pro Midsouth Rice (Arkansas, Louisiana, Mississippi)“ (PDF). USDA. Srpna 2004.
  139. ^ Cartwright, R.D .; et al. (1993). „Monitorování rýžové choroby na různých místech a v různých kulturních postupech v Arkansasu“. Arkansas Rice Research Studies 1993.
  140. ^ Damicone, John a kol., Rice Diseases in Mississippi: A Guide to Identification, Mississippi State University Cooperative Extension Service, publikace 1840, 1992
  141. ^ Damicone, J.P .; M.V. Patel; W.F. Moore (březen 1993). "Hustota Sclerortia of Rhizoctonia solani a výskyt plášťového světla v rýžových polích v Mississippi". Nemoc rostlin. 77 (3): 257. doi:10.1094 / PD-77-0257.
  142. ^ Groth, D.E. (Podzim 1996). "Dva nové fungicidy k potlačení nemocí z rýže". Louisiana zemědělství. 39 (4): 31.
  143. ^ A b Webster, Robert K; Pamela S. Gunnell (1992). Kompendium nemocí z rýže. APS Stiskněte. ISBN  978-0-89054-126-5.
  144. ^ Groth, D.E .; M.C. Spěch; C.A. Hollier (červenec 1991). Rice Diseases and Disorders in Louisiana: Bulletin No. 828. Louisiana State University Agricultural Exeperiment Station.
  145. ^ „Sheath Blight and Blast: Nové fungicidy nabízejí větší flexibilitu při ochraně výnosu,“ Rice Journal, s. 14, 15. dubna 2003
  146. ^ Cartwright, Rick (2. srpna 2002). "Ovládání falešného smutu v rýži". Delta Farm Press.
  147. ^ A b C d E F Sinclair, J.B .; P.A. Backman (1989). Kompendium nemocí sóji. APS Stiskněte. ISBN  978-0-89054-093-0.
  148. ^ A b C d E F Colyer, Patrick D. (1989). Atlas sojových nemocí. Louisiana State University zemědělská experimentální stanice.
  149. ^ https://www.apsnet.org/edcenter/intropp/lessons/fungi/ascomycetes/pages/suddendeath.aspx
  150. ^ A b C Greathead, Arthur S. (červenec 1980). "Špenátová plíseň bojovala s chovem a chemikáliemi". Western Grower and Shipper. 51 (7): 38–39.
  151. ^ „Nová odrůda špenátu má toleranci vůči modré plísni“. Western Grower and Shipper. 51 (5): 22. května 1980.
  152. ^ Dainello, F.J .; R.K. Jones; R.R.Heineman (prosinec 1983). Účinnost vybraných fungicidů při hubení plísně špenátové (Peronospora effusa). Texas Agricultural Experiment Station.
  153. ^ A b Correll, James; et al. (Červenec 1994). "Ekonomicky významné nemoci špenátu". Nemoc rostlin. 78 (7): 653–660. doi:10.1094 / PD-78-0653.
  154. ^ Ivanoff, SS (1937). „Špenát a cibule v zimní zahradě v Texasu“. Reporter nemocí rostlin. 31: 114–115.
  155. ^ Jones, R. K.; FJ Dainello (duben 1983). "Účinnost metalaxylových a metalaxylových tankových směsí při kontrole albugo occidentalis a Peronospora effusa na špenátu (spinacea oleracea)". Nemoc rostlin. 67 (4): 405–407. doi:10.1094 / PD-67-405.
  156. ^ Whitney, E.D .; James E. Duffus (1986). Kompendium chorob řepy a hmyzu. APS Stiskněte. ISBN  978-0-89054-070-1.
  157. ^ „Plodinový profil pro cukrovou řepu v Kalifornii“. USDA. Říjen 1999. Archivovány od originál 5. září 2009. Citováno 8. června 2009.
  158. ^ Hills, F.J .; D.H. Hall; D.G. Kontaxis (červen 1975). "Vliv padlí na produkci cukrové řepy". Reporter nemocí rostlin. 59 (6): 513.
  159. ^ Skoyen, I.O .; R.T. Lewellen; J.S. McFarlane (červen 1975). „Vliv padlí na produkci cukrové řepy v kalifornském údolí Salinas“. Reporter nemocí rostlin. 63 (3): 239.
  160. ^ "Enzym může chránit cukrovou řepu před onemocněním listových skvrn". Zemědělský výzkum. 87 (5): 14. května 2003.
  161. ^ Coons, G.H., Dewey Stewart a F.G. Larmer, Onemocnění listovou skvrnou cukrové řepy a její kontrola přímými opatřeními, ministerstvo zemědělství USA, oběžník č. 115, duben 1930
  162. ^ Shane, W.W .; P.S. Teng (1992). "Dopad listové skvrny Cercospora na hmotnost kořene, výtěžnost cukru a čistotu betavulgaris". Nemoc rostlin. 76 (8): 812. doi:10.1094 / PD-76-0812.
  163. ^ Zvláštní výjimka pro použití tetrakonazolu na cukrové řepě v ministerstvech zemědělství v Minnesotě a Severní Dakotě, Minnesotě a Severní Dakotě, oddíl 18 Žádost o mimořádnou výjimku, 2000
  164. ^ A b Raid, Richard N. (1991). "Fungicidní kontrola nemocí listové sladké kukuřice v přítomnosti vysokých úrovní inokula". Sborník Florida State Horticultural Society. 194 (267).
  165. ^ A b „Crop Profile for Corn (Sweet) in New York“. USDA. Květen 1999. Archivovány od originál 5. září 2009. Citováno 8. června 2009.