Pom1 - Pom1

Pom1
Identifikátory
OrganismusSchizosaccharomyces pombe
SymbolSPAC2F7.03c
Entrez2541889

Pom1 je protein polarity kináza ve štěpných kvasnicích, Schizosaccharomyces pombe (S. pombe), který se lokalizuje na buněčné konce a reguluje buněčné dělení. Jak se buňka prodlužuje, hladina Pom1 ve středu klesá, což spouští mitózu.[1]

The gen pom1 kóduje protein dlouhý 1087 aminokyselin s proteinem kináza doména pravděpodobně umístěná na karboxylovém konci.[1] Pom1 reguluje signální cestu, která zahrnuje Cdk1 a nakonec reguluje mitotický vstup.[2] Buňky s mutovaným pom1 tvoří septa a růstovou zónu, ale vykazují řadu abnormalit, včetně nesprávně umístěných nebo nesprávně orientovaných septa, bipolárního růstu nahrazeného náhodným růstem na jednom konci nebo nesprávné lokalizace růstové osy vedoucí k abnormálnímu rozvětvení.[1][3]

Pom1 hraje důležitou roli při rozlišování starého a nového konce S. pombe buňka. Normální růst buněk začíná okamžitě na starém konci buňky a se zpožděním na novém konci.[3] pom1 mutanti vykazují okamžitý růst na obou koncích. Protože se ukázalo, že Pom1 je na novém konci vysoce koncentrovaný a na starém konci téměř chybí, je spolu s dalšími faktory součástí inhibičního signálu, který brání okamžitému růstu z nového konce.[1] Nadměrná exprese Pom1 může také vést k tvorbě nových růstových konců.[3]

Pom1 je relativně jedinečný protein kináza jako jeho nejbližší homolog v S. pombe je pouze 55% identická. Homology v jiných organismech zahrnují Dyrk u potkanů, Dyrk2 a Dyrk3 u lidí, Yak1p v S. cerevisiae,[4] a minibrain u Drosophily a lidí.[1][5]

Lokalizace buněk

V době mezifáze „Pom1 sídlí v celé buňce včetně mediálních kortikálních uzlin. Lokalizace Pom1 k pólům během buněčného dělení je regulována pomocí Tea1 a Tea2.[6][7] Při nepřítomnosti Tea1 a Tea2 si Pom1 udržuje svoji kináza aktivita, ale nelokalizuje se na konce buňky.[3][7] Mikrotubuly také pomozte lokalizovat Pom1 v buňce, protože bylo prokázáno, že přemístění Pom1 je výsledkem mikrotubul demontáž.[1] Strukturálně jsou pro lokalizaci na konci buněk nezbytné jak katalytické, tak nekatalytické oblasti Pom1.[3]

Cdr2, Cdr1, Wee1 Proteiny Mid1 a Blt1 jsou také lokalizovány v mediálním uzlu během mezifáze a předpokládá se, že jsou součástí signální dráhy pro mitotický vstup.[2][8] Lokalizace Cdr2 do středu buňky je regulována expresí Pom1 a dalších signálů, protože mutanty pom1 umožňují Cdr2 difundovat z lokalizace mediálního uzlu do jedné poloviny buňky.[2]

Velikost buňky a prostorový gradient

Obrázek 1: Předpokládaná cesta pro regulaci mitotického vstupu pomocí Pom1. Pom1 potlačuje Cdr2, který aktivuje Cdr1 a potlačení Wee1. Potlačení Wee1 umožňuje Cdk1 pomoci buňce vstoupit do mitózy.

Pom1 vytváří prostorový gradient, když se buňky prodlužují Fáze G2.[2] Obrázek 1 ilustruje v karikatuře přechod Pom1 (znázorněný tmavým stínováním) napříč relativně malou buňkou během mezifáze a protáhlá buňka procházející skrz Fáze G2. Jak se buňky prodlužují, koncentrace Pom1 vrcholí na dvou pólech a klesá směrem ke středu buňky. Cdr2 čte klesající inhibiční signál z koncentračního gradientu Pom1 a aktivuje Cdr1 a Blt1, které byly lokalizovány v mediálním uzlu kvůli náboru Cdr2.[2] Cdr1 pak fosforyluje a inhibuje Wee1, také přijati do mediálního uzlu přítomností Cdr2.[2] Fosforylovaný Wee1 umožňuje Cdc25 defosforylovat Cdk1 a přesuňte buňku dovnitř mitóza.[2] Obrázek 2 zobrazuje zjednodušenou signalizační cestu pro velikostně závislý mitotický vstup na základě tohoto modelu. Inhibice Wee1 přímo Cdr2 zobrazené čárkovanou čarou ještě nebylo potvrzeno.

Zkoušky modelu Pom1

Obrázek 2: Charakterizace lokalizace Pom1 v různých bodech buněčného cyklu. Pom1 je znázorněno tmavě šedým stínováním. Bílé oblasti představují nízké koncentrace Pom1 po prodloužení buňky a Pom1 se lokalizuje na koncích buňky.

Ukázalo se, že Pom1 označený GFP vytváří gradient v podlouhlých buňkách, jak je charakterizováno na obrázku 1. Podle obrázku 2 snížená Pom1 v místě Cdr2 v mediálním uzlu snižuje inhibici Cdr2. Jako potvrzení interakce tohoto modelu výsledky ukazují, že buňky s delokalizovaným Pom1, které zůstávají plné kináza aktivita mutantů tea1 zpomaluje mitotický vstup. To je pravděpodobně způsobeno pokračující inhibicí Cdr2.[2] Další experimenty, které ektopicky lokalizovaly Pom1 v celé kůře, také ukázaly opožděný mitotický vstup ekvivalentní a cdr2 knockdown znovu naznačuje, že Pom1 inhibuje Cdr2 a jak Pom1 klesá s prodloužením buněk, Cdr2 začíná signální cestu k inhibici Wee1 a nakonec vstoupit mitóza.[2]

Budoucí výzkum

Zůstává nejasné, zda Cdr2 inhibuje Wee1 přímo nebo pokud jedná pouze nepřímo prostřednictvím Cdr1 nebo jiného kinázy. Kromě toho může Blt1, také lokalizovaný v mediálním uzlu, hrát roli v regulaci mitotického vstupu. Mutanti Blt1 vykazují prodlouženou délku v souladu se zpožděným mitotickým vstupem.[2] I když je v současné době nepotvrzeno, spekuluje se, že Blt1 působí inhibicí Wee1.[2]

Reference

  1. ^ A b C d E F Bahler, J. a Pringle, J. R. "Pom1p, štěpná kvasinková proteinová kináza, která poskytuje informace o poloze jak pro polarizovaný růst, tak pro cytokinézu." Genes and Development 12, 1356-1370 (1998).
  2. ^ A b C d E F G h i j k Moseley, J. B., Mayeux, A., Paoletti, A. a Nurse, P. „Prostorový gradient koordinuje velikost buněk a mitotický vstup do štěpných kvasinek.“ Nature 459, 857-861 (2009).
  3. ^ A b C d E Bahler, J. a Nurse, P. "Štěpná kvasinková aktivita kinázy Pom1p je regulována buněčným cyklem a je nezbytná pro buněčnou symetrii během růstu a dělení." EMBO Journal 20, 1064-1073 (2001).
  4. ^ Souza, G. M., Lu, S. a Kuspa, A. „YakA, protein kináza potřebné pro přechod od růstu k vývoji v Dictyostelium. Development 125, 2291-2302 (1998).
  5. ^ Tejedor, F., Zhu, X.R., Kaltenbach, E., Ackermann, A., Baumann, A., Canal, I., Heisenberg, M., Fischbach, K.F. a Pongs, O. „Minibrain: nový protein kináza rodina zapojená do postembryonální neurogeneze u Drosophila. Neuron 14, 287-301 (1995).
  6. ^ Browning, H., Hayles, J., Mata, J., Aveline, L., Nurse, P. a McIntosh, J. R. „Tea2p je protein podobný kinesinu potřebný pro generování polarizovaného růstu štěpných kvasinek.“ The Journal of Cell Biology 151,15-27 (2000).
  7. ^ A b Behrens, R. a Nurse, P. „Role štěpného droždí tea1p v lokalizaci faktorů polarity a při organizaci mikrotubulárního cytoskeletu.“ The Journal of Cell Biology 157, 783-793 (2002).
  8. ^ Morrell, J.L., Nichols, C.B. a Gould, K.L. "Kináza rodiny GIN4, Cdr2p, působí nezávisle na septinech ve štěpných kvasinkách." The Journal of Cell Science 117, 5293-5302 (2004).